早鸽—汇聚行业精英
  • 联系客服
  • 帮助中心
  • 投诉举报
  • 关注微信
400-006-1351
您的问题早鸽都有答案
3000+专业顾问
搜索
咨询

类风湿关节炎特异性抗原制作方法

  • 专利名称
    类风湿关节炎特异性抗原制作方法
  • 发明者
    吴乔, 吴玉章
  • 公开日
    2012年2月8日
  • 申请日期
    2011年1月24日
  • 优先权日
    2011年1月24日
  • 申请人
    中国人民解放军第三军医大学
  • 文档编号
    A61P19/02GK102344916SQ20111002563
  • 关键字
  • 权利要求
    1.过氧化物还原酶IV在制备类风湿关节炎特异性抗原中的应用2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于所述过氧化物还原酶IV在制备类风湿关节炎诊断试剂中的应用3.根据权利要求2所述的应用,其特征在于所述过氧化物还原酶IV在制备类风湿关节炎早期诊断试剂中的应用4.根据权利要求1所述的应用,其特征在于过氧化物还原酶IV在制备类风湿关节炎疫苗中的应用
  • 技术领域
    本发明涉及医学领域,特别涉及类风湿关节炎特异性抗原
  • 背景技术
  • 具体实施例方式
    以下将参照附图,对本发明的优选实施例进行详细的描述实验材料 1. 1试剂
  • 专利详情
  • 全文pdf
  • 权力要求
  • 说明书
  • 法律状态
专利名称:类风湿关节炎特异性抗原的制作方法类风湿关节炎(RA)是一种以滑膜炎为基本病理改变,以慢性破坏性关节病变为特征的全身性自身免疫病,大多病情呈进行性,最终导致关节纤维性或骨性强直而严重致残,严重影响患者生活质量。未经正确治疗的类风湿关节炎可迁延不愈,甚至导致关节畸形。作为自身免疫性疾病,致病抗原驱动的自身反应性CD4+T细胞活化是类风湿关节炎发病的核心途径。对于类风湿关节炎的诊断,现在主流仍然沿用1987年美国风湿病学学会RA的分类标准,其主要靠临床表现并排除其他关节炎从而对RA进行判断。另外,X线改变和类风湿因子也是判断RA的常用标准。但上述方法操作繁琐且特异性不高,且不适用于早期诊断。众所周知,RA的病理改变从滑膜组织开始逐渐向软骨到骨发展。RA在早期若未得到有效治疗,将会引起关节功能障碍甚至劳动力丧失,并导致全身多脏器受累进而危及生命。如果能尽早对RA病情做出诊断,及早治疗,从而阻止或延缓其发展,将能有效的提高RA 的治疗效果并减少其并发症的发生。而针对RA早期有高度敏感性和特异性的检测指标是实现RA早期诊断和治疗的前提。早期诊断指标中,IL-8、IL-6水平在巨细胞病毒DNA阳性的类风湿关节炎患者中升高和CMV基因组出现之间存在联系,但特异性和敏感性低。在RA自身抗体作为检测指标方面类风湿因子(RF)存在灵敏度低的缺点;在早期RF阴性的类风湿关节炎病人中可 53. 3%的病人抗核周因子(APF)呈阳性,但APF抗原片的保存时间较短(仅为1 2周),检测稳定性低;Μ抗体在类风湿关节炎中阳性率为40%,特异性为98. 9%,但类风湿关节炎早期仅约23% ;过氧化物还原酶IV (在说明书附图中简称“IV”)和类风湿关节炎的相关性研究尚未有人报道。
有鉴于此,本发明的目的之一在于提供一种过氧化物还原酶IV的新应用,该应用是通过在RA滑膜组织中筛选出RA备选抗原,再在备选抗原中筛选出过氧化物还原酶IV并对其抗体在初诊和复诊RA患者血清中通过间接ELISA进行特异性和敏感性检测,过氧化物还原酶IV主要表达于RA病变起始部位滑膜细胞胞浆,过氧化物还原酶IV体外特异性刺激RA患者外周血单个核细胞(PBMC)增殖并分泌RA发病相关细胞因子IL-17、TNF-α和 IFN- γ,所以过氧化物还原酶IV是新的RA疾病相关抗原,该抗体检测的新应用在初诊RA患者血清当中特异性和敏感性高,为类风湿关节炎的早期诊断及治疗提供了新思路。为实现上述目的,本发明的技术方案为过氧化物还原酶IV在制备类风湿关节炎特异性抗原中的应用。进一步,所述过氧化物还原酶IV在制备类风湿关节炎诊断试剂中的应用; 进一步,所述过氧化物还原酶IV在制备类风湿关节炎早期诊断试剂中的应用; 进一步,过氧化物还原酶IV在制备类风湿关节炎疫苗中的应用。本技术方案分别利用免疫蛋白组学方法在RA滑膜中筛选出RA备选抗原及抗体, 通过TOF-TOF质谱法及免疫蛋白印迹(Western Blotting)法进一步鉴定和验证备选抗原中的五号蛋白点为过氧化物还原酶IV ;利用Western-blot检测RA和骨性关节炎(OA)滑膜组织中过氧化物还原酶IV表达差异;通过免疫组织化学染色方法证实过氧化物还原酶IV主要表达于RA起始病变部位滑膜细胞胞浆;借助间接法ELISA测定过氧化物还原酶IV抗体在 RA血清中的特异性和敏感性;并发现过氧化物还原酶IV抗体滴度在初诊的早期RA患者(病程少于3个月)中明显高于正常人,并且高于经免疫抑制治疗的复诊RA患者;通过细胞增殖实验证实了过氧化物还原酶IV特异性刺激RA外周血单核细胞增殖,并分泌IL-17、TNF- α 和IFN-Y等与RA发病相关细胞因子。根据上述结果,本发明得出如下结论过氧化物还原酶IV为RA特异性疾病相关抗原。在上述研究基础上针对过氧化物还原酶IV抗原进行改造等方式制备疫苗可能为RA的特异性免疫治疗提供新的手段。本发明的有益效果在于过氧化物还原酶IV在制备类风湿关节炎特异性抗原中的应用中,其特异性和敏感性高,尤其适用于早期诊断试剂的应用,过氧化物还原酶IV还为制备类风湿关节炎疫苗中提供了新思路。
为了使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚,下面将结合附图对本发明作进一步的详细描述,其中
图1为RA滑膜组织蛋白点2-D分离后Coomassie blue染色双向凝胶电泳图。图2为RA患者血清与图1蛋白点杂交的双向凝胶电泳图。图3为OA患者血清与图1蛋白点杂交的双向凝胶电泳图。图4为正常人血清与图1蛋白点杂交的双向凝胶电泳图。图5为系统性红斑狼疮(SLE)患者血清与图1蛋白点杂交的双向凝胶电泳图。图6为RA滑膜组织中特异性与RA患者血清反应的双向凝胶电泳图,包含12个蛋白点。图7为T0F-T0F蛋白质串联质谱对第5号蛋白点的鉴定图谱。图8为免疫印迹法蛋白定性检测电泳谱,其中A为单向凝胶电泳图(1、2为不同 RA滑膜组织,3、4为Hela细胞阳性对照),B为RA滑膜组织双向凝胶电泳图。图9为免疫印迹法检测RA患者和OA患者滑膜组织中过氧化物还原酶IV的差异表达电泳图(1、2分别为RA和OA滑膜组织)。图10-A和图10-B为苏木素-依红(HE)染色RA滑膜组织的病理照片图,图10_C 和图10-D为RA滑膜组织过氧化物还原酶IV免疫组化染色的病理照片图。图11为PBMC增殖实验的放射强度(cpm)分析图,其中A为cpm值分析图,B为刺激指数(stimulation index, Si)分析图。图12为CFSE染色流式细胞检测PBMC增殖图。
图13为ELISA法检测过氧化物还原酶IV刺激PBMC IFN- y、IL-17和TNF- α分泌量的分析图,其中,A为IFN-Y的分析图,B为IL-17的分析图,C为TNF-α的分析图。

丙烯酰胺、甲叉丙烯酰胺、TEMED、过硫酸铵、十二烷基磺酸钠、Tris、甘氨酸、溴酚蓝、二硫苏糖醇(DTT)、CHAPS、低熔点琼脂糖、低分子量标准蛋白、IPG缓冲液、IPG胶条(pH3_ll L)、IPG 覆盖油、尿素和 PhastGel Blue R 购自 Amersham Pharmacia Biotech ;碘乙酰胺购自Sigma;测序级胰蛋白酶购自!Iomega;蛋白酶抑制剂和ECL Western blot检测试剂盒购自Roche ;甲醇、冰乙酸和无水乙醇购自重庆川东化工(集团)有限公司化学试剂厂; 辣根酶标记山羊抗人IgG (H+L)、辣根酶标记山羊抗小鼠IgG (H+L)、Power VisionTM(IgG 抗体-HRP多聚体)复合物和DAB显色试剂盒购自北京中山生物技术公司;鼠抗人过氧化物还原酶IV单克隆抗体购自Abcam公司;Recombinant human过氧化物还原酶IV购自 Lifescience公司;多聚甲醛购自北京化学试剂公司。1. 2 仪器
IPGphor等电聚焦仪、SE600垂直电泳仪、MultiTempIII循环水浴和TE50X电转仪购自 Amersham Pharmacia Biotech公司;550型酶联仪和GS-800图像扫描系统Bio-Rad公司; MALDI-T0F质谱仪购自Bruker公司;低温高速离心机购自中国科学院武汉科学仪器厂;脱色摇床购自江苏海门其林贝尔仪器制造有限公司;LEICA AM 2135型切片机购自Leica公司;BX-50型Olympus显微镜和PM-20型Olympus显微摄像系统Olympus公司;紫外分光光度仪Backmen公司。主要试剂配制
1.3.1样品裂解液贮液40 mmol/L Tris, 7 mol/L尿素,2 mol/L硫脲,质量分数为 4%的 CHAPS,Iml/ 管分装,_70°C冻存。1.3.2 10mg/ml RNase A,_20°C冻存备用。1. 3. 3 mg/ml DNase I,_20°C冻存备用
1. 3. 4 20X蛋白酶抑制剂1粒蛋白酶抑制剂溶解于350 μ L纯水中。1.3.5 1 mol/L DTT,_20°C冻存备用。1. 3. 6 IPG buffer,4°C保存备用。1.3.7样品裂解液工作液40mmol/L Tris, 7 mol/L尿素,2mol/L硫脲,质量分数为 4% 的 CHAPS,100μ g/ml DNase I,25 μ g/ml RNase A, IX 蛋白酶抑制剂,0.8% IPG buffer,60 mmol/L DTT。1. 3. 8溶涨液贮液7 mol/L尿素,2 mol/L硫脲,质量分数为2%的CHAPS,痕量溴酚蓝,-70°C冻存。1. 3. 9溶涨液工作液溶涨液贮液中加入质量分数为1 %的IPG buffer, 60 mmol/ L DTT (临用前加)。1. 3. 10 平衡缓冲液50 mmol/L Tris-Cl pH 8. 8,6 mol/L urea,体积分数为
530%的glycerol,质量分数为2%的SDS,溴酚蓝痕量。1. 3. 11质量分数为0. 5%低熔点琼脂质量分数为0. 5%的低熔点琼脂溶解于 SDS-PAGE电泳缓冲液。1. 3. 12 30%丙烯酰胺贮液30g丙烯酰胺,0. Sg甲叉丙烯酰胺溶解于IOOml纯水中,过滤,4°C贮存于棕色瓶中。1. 3. 13 4X 分离胶缓冲液1. 5 mol/L Tris-Cl (pH 8. 8) 1.3.14 10% SDS IOg SDS 溶解于 50ml H20 中,定容至 IOOml。1. 3. 15 10%过硫酸铵0. Ig过硫酸铵溶解于Iml纯水中。1. 3. 16 SDS-PAGE 电泳缓冲液:94g 甘氨酸,12. Ig Tris, 50ml 10% SDS,溶解于水并定容至1000ml。1. 3. 17考马斯亮蓝染色液贮液溶解1片PhastGel Blue R于80ml水中,搅拌 5-lOmin,加入120mL甲醇,搅拌直至染料完全溶解,过滤溶液备用。1. 3. 18考马斯亮蓝染色液工作液(0. 1% )染色液贮液与体积分数为20%乙酸按体积比为1 :1的比例混合。1. 3. 19脱色液体积分数为30%乙醇,体积分数为10%乙酸溶于水中。1. 3. 20转移缓冲液(39mm甘氨酸,48mmTris碱,质量分数为0. 037%的SDS,体积分数为20%甲醇)称取甘氨酸2. 9g,1Tris碱5. 8g,SDS 0. 037g,并加入200ml甲醇,最后加水补充至总体积为1000ml。1. 3. 21 TBS (50mM Tris 碱,150mM 氯化钠,ρΗ7· 5)称取 6. 05g Tris 碱,8. 76g 氯化钠,用HCl调节pH值至7. 5,加水至总体积为1L,2_8°C保存3个月。1. 3. 22 TBST 将 ImLTween 20 加入 IL TBS 中,2_8°C保存 3 个月。1. 3. 23 封闭液加入IOmL封闭液贮液到90mlTBS中,在-15 _25°C稳定保存。1. 3. 24 0. 5%封闭液加入5mL封闭液贮液到95mLTBS中,在-15 _25°C稳定保存。1.3. 25 一抗(血清)用0. 5%的封闭液稀释一抗。1. 3. 26 POD标记的抗鼠或兔IgG 用100 μ L纯水将冻干粉溶解,得到二抗贮液。 用0.5%的封闭液稀释得到工作液。40mU/mL 二抗通常足够用来检测。该贮液在2_8°C可以保存12个月,但工作液需要新鲜配置。1. 3. 27 ECL检测溶液将溶液A与溶液B以体积比为1 1的比例混合,该溶液现配现用。1. 3. 28 0. OlM PBS :50mL0. 2mol/L PB 加 8. 8g NaCl,双蒸水定容至 IOOOmL01. 3. 29 RIPA 裂解液1.5M Nacl ImL,IOOmM Tris-HCL (pH7. 4) 5mL,加质量分数为 10% SDS IOOuL, 500mM DTT 100uL,NP_40 lOOuL,Complete Mini (蛋白酶抑制剂)1 片,
三蒸水定容至10 mL。1. 3. 30 包被液0. 85M (PH 9. 6)碳酸盐缓冲液1. 59g Na2CO3 加 2. 93g NaHCO3, 三蒸水定容1000mL。
1.3.31洗涤液0. OlM pH7. 4 PBS +吐温-20 (T)使最终质量分数为 0. 05%。1. 3. 32底物溶液磷酸盐-柠檬酸缓冲液(ρΗ5· 0 5· 5) :0. IM柠檬酸Μ. 3mL加入 25. 7ml 0. 2M Na2HPO4 · 12H20加入邻苯二胺40. Omg,定容至50mL,临用前加0. 15mL体积分数为30%的吐02。
1.3. 33终止剂22. 2mL硫酸加入蒸馏水177. 8mL。1.4样品5例RA滑膜组织由北京大学附属人民医院风湿免疫科栗占国教授提供;534例RA (其中初诊67例、复诊467例)、65例OA、120例SLE、10例硬皮病 (scleroderma)、15例皮肌炎(dermatomyositis)及120例正常对照(NC)血液标本源自西南医院。双向凝胶电泳法筛选RA滑膜组织中的备选抗原
2.1样品制备
2. 1. 1取出-70°C冻存的RA滑膜组织样品,室温平衡约lOmin,加入样品裂解液工作液充分研磨,涡旋器上振荡约20-30min后,室温放置l_2h,使细胞蛋白充分溶解,经过超声裂解后 40C 12000rpm 1 小时。2.1.2 样品溶液的蛋白定量(DC Protein Assay, BIO-RAD COMPANY)。2. 1. 2. 1配制蛋白标准液(0. 25mg/ml 1. 5mg/ml蛋白)先将BSA溶解于水配制10mg/mL的BSA母液,然后用样品裂解液稀释成0,0. 25,0. 5,1. OU. 5mg/ml五个不同浓度的BSA溶液。2. 1. 2. 2样品液的稀释用样品裂解液将样品液稀释10、20倍备用。2. 1. 2. 3准备工作液试剂A0 每Iml试剂A加入20 μ L试剂S (该工作液试剂Α0 可稳定1周,即使1天以后形成了沉淀。如果形成了沉淀,加热溶液并振荡。不要用加样枪头吹打,因为容易堵塞枪头而改变加入样品中的试剂体积)。2. 1. 2. 4样品及标准品Α655值的测定吸取5 μ L标准液和样品加入干净、干燥的微孔板。每孔加入25 μ L试剂Α0或试剂Α。每孔加入200 μ L试剂B。15min后,655nm测吸光值。Ih内吸光值稳定。2. 1. 2. 5建立线性方程,计算样品蛋白浓度。实验方法
2. 2. 1 2D-PAGE第一向——等电聚焦
2. 2. 1. 1取出_20°C冻存的IPG strip,室温平衡数分钟。2. 2. 1. 2样品和溶涨液在IPG holder中混合,达到合适的上样量,去掉IPG胶条的保护膜,胶面朝下,避免产生气泡,放入溶涨液中。IPG胶条上覆盖一层矿物油,盖上盖子, 溶涨过夜。2. 2. 1. 3仪器运行参数如下
等电聚焦运行参数温度,20°C ;最大电流,50mA per IPG strip ;样品体积, 350 μ 1 (180mm IPG strip)或 250 μ 1 (130mm IPG strip) ;30V,10-12 小时(溶涨);200V, 1 小时;500V, 1 小时;500-8000V, 30min ;8000V, 5-6 小时(IPG 3-10L),6-7 小时(IPG 4-7)。2. 2. 1. 4达到适当的总电压-时间积(Total Volt-hours, Vh)后,取出胶条于平衡液中平衡。2. 2. 2 平衡
2. 2. 2. 1 IOOmg DTT溶解于IOmL平衡缓冲液中(平衡缓冲液I )。取出IPG胶条分别放入玻璃管中,在振荡仪上振荡平衡15min。2. 2. 2. 2 400mg碘乙酰胺溶解于IOmL平衡缓冲液(平衡缓冲液II ),将胶条转移到平衡缓冲液II中,盖上盖,在振荡仪上振荡平衡15min。2. 2. 3 2D-PAGE 第二向-SDS-PAGE


本发明涉及医学领域,特别涉及过氧化物还原酶Ⅳ在制备类风湿关节炎诊断试剂,所述过氧化物还原酶Ⅳ在制备类风湿关节炎早期诊断试剂中的应用,过氧化物还原酶Ⅳ在制备类风湿关节炎特异性抗原中的应用中,其特异性和敏感性高,尤其适用于早期诊断试剂的应用,过氧化物还原酶Ⅳ还为制备类风湿关节炎疫苗中提供了新思路。



查看更多专利详情

下载专利文献

下载专利