专利名称:蛋白质的快速脱水的制作方法图1是本发明方法分离得到的蛋白质—共沉淀剂粒子的典型透射电镜照片;图2是图1所示的蛋白质—共沉淀剂粒子的高度放大照片;图3所示为未加入盐时在1-丙醇中沉淀出的枯草杆菌蛋白酶;图4所示为在含水26%的1-丙醇中共沉淀出的枯草杆菌蛋白酶;图5表明了将1-丙醇加入到枯草杆菌蛋白酶和K2SO4水溶液的效果;图6所示为枯草杆菌蛋白酶包膜K2SO4结晶的AFM照片;图7所示为无枯草杆菌蛋白酶存在时的K2SO4单晶表面的AFM照片;图8所示为枯草杆菌蛋白酶包膜的K2SO4单晶表面的AFM照片;图9表明了不同氨基酸共沉淀剂对于枯草杆菌蛋白酶活性的影响;实施例1 枯草杆菌蛋白酶的制备枯草杆菌蛋白酶Carlsberg(VIII型细菌,从地衣芽孢杆菌中提取,经结晶和冷冻干燥制得,得自Sigma,Poole,U.K.)。将2mg枯草杆菌蛋白酶(原始样品)溶解在50μl缓冲剂(Tris,10mM,pH7.8)中,并向其中加入150μl共沉淀剂、硫酸钾(K2SO4,120g/l)的饱和溶液。所得溶液中蛋白质的最终浓度为0.37mM,在沉淀物中K2SO4与酶的摩尔比大约为1400,相当于枯草杆菌蛋白酶重量百分含量约为11%。制备后,立即用移液管将200μl的共沉淀剂-酶溶液移入盛有3ml丙醇的7ml的玻璃小瓶中。采用Gilson微量移液管,分四次将溶液移入(4×50μl),同时用定轨摇床摇动,摇动速度约为100rpm。水溶液加入到干燥的有机溶剂中会立即产生K2SO4与蛋白质的共沉淀。将盛有非常精细分散的共沉淀剂-酶颗粒的反应瓶盖上盖子,并进一步在800rpm摇动速度下搅拌15分钟;所得混合物中水的含量大约为6.25%(v/v)。从搅拌器上取下反应瓶,使沉淀物沉降。沉淀物沉降后(约30分钟),移出上层清液,留下约100μl的有机溶剂。(可采用轻度的离心作用加速沉降约1分钟)。再向反应瓶中加入3ml的溶剂,并将混合物在定轨摇床上摇动15分钟,最终水的含量约为0.2%(v/v)。将混合物沉降或离心沉降,移出大部分的有机溶剂,剩下盐-酶的沉淀物,其悬浮在大约100μl的溶剂中。根据应用需要,将该悬浮液贮存或进一步处理。也可采用氯化钾KCl(饱和溶液,281.5g/l)作为共沉淀剂,并按照上述K2SO4的相同的方法进行试验。采用相同的酶浓度和相同的饱和盐溶液体积,最终盐与酶的摩尔比大约为7500,相当于枯草杆菌蛋白酶重量百分含量约为5%。试验发现,由于形成了两液相的混合物,因此加入乙腈(CH3CN)之中并不适合KCl-酶混合物的沉淀。氨基酸作为共沉淀剂采用得自Aldrich U.K.的甘氨酸、赖氨酸、精氨酸和谷氨酸作为共沉淀剂进行试验。沉淀将在100μl氨基酸共沉淀剂的饱和溶液中的4mg枯草杆菌蛋白酶加入到6ml丙醇中进行沉淀。将所得到的悬浮液进行离心分离(分装在Eppendorf试管中,6×1ml),然后用1-丙醇洗涤一次(每一个Eppendorf试管中加入1ml 1-丙醇)。沉淀物样品也可以采用D(+)海藻糖(α-D-吡喃葡糖-α-D-吡比喃葡糖苷)(Sigma,Poole,U.K.)作为共沉淀剂来制备。将海藻糖溶解于蒸馏水中制成饱和溶液(约76g/l),采用上述相同的方法进行制备。最终糖与蛋白质的摩尔比为406,相当于枯草杆菌蛋白酶重量百分含量约为15%。共沉淀剂-枯草杆菌蛋白酶沉淀物的一般外观和性能当蛋白质-共沉淀剂溶液加入到有机溶剂中后立即形成非常细的白色沉淀,每一个沉淀粒子都非常小,在溶剂中经过一定的时间后会沉淀下来。其粒子大小与无蛋白质存在时共沉淀剂沉淀物(如K2SO4、KCl和海藻糖)的颗粒尺寸有明显的差别,无蛋白质存在时共沉淀剂沉淀物的颗粒尺寸较大。如果将不含有共沉淀剂的蛋白质溶液加入到溶剂中,则所得的沉淀物的颗粒形态也非常不同,为纤维状的白色沉淀物。沉淀出来的K2SO4-枯草杆菌蛋白酶的粒子在溶剂中保存几个星期后,其颗粒形态或聚集没有明显地变化。K2SO4-枯草杆菌蛋白酶的共沉淀物可很容易地重新溶解在pH值为7.8的水溶液中或蒸馏水中,以在水溶液中进行分析。就一切情况而论,采用氨基酸作为共沉淀剂均可以得到很细的白色沉淀物。电镜显示,得到的是具有甘氨酸的针形粒子。实施例2 不同有机溶剂的试验表1 给出了迄今为止用于沉淀试验的溶剂种类。这些溶剂均为Aldrich公司的产品,并且是分析/光谱级产品(99+%)。表1 用于沉淀的溶剂的水含量。
采用卡尔·费歇尔自动水滴定法、使用Metrohm 684F库仑仪(Metrohm,瑞士)测定水含量
测定采用不同有机溶剂制备的共沉淀剂-酶的生物活性众所周知,丝氨酸蛋白酶例如枯草杆菌蛋白酶Carlsberg或α-胰凝乳蛋白酶在悬浮于有机溶剂时具有催化活性。这种体系可以很方便地用于测定脱水过程对于蛋白质生物活性的影响。通过在相同条件下对一系列从不同溶剂中分离出的酶-共沉淀剂沉淀物的测试,可以测定出哪些溶剂和共沉淀剂可最小程度地使蛋白质变性。另外,可将其结果与通过冷冻干燥法获得的酶颗粒进行比较。将按上述制备的酶-共沉淀剂悬浮液用测试溶剂洗涤一次,以清除残留的沉淀溶剂,然后按下述方法进行测试。测试结果见表2和表3。
在两种不同的、并控制水含量的溶剂(CH3CN和正己烷)中,测定催化活性。培养基是N-乙酰基-L-苯丙氨酸乙酯(10mM)和1-丙醇(1M)。采用CH3CN作为反应溶剂,选择如前所述的N-乙酰基-L-酪氨酸乙酯(10mM)和1-丙醇(1M)作为培养基。酶的浓度为1mg/ml。典型地,在配有螺旋盖和四氟乙烯垫的4ml反应瓶中装有2ml溶剂。在试验过程中,将反应瓶置于定轨摇床上进行摇动,摇动速度约为250rpm。定时地,将50μl溶剂混合物移出,并用适当的溶剂进行稀释(450μ1)。然后将这些反应瓶在-4℃下存放,以备以后进行气相色谱分析(G.C.)。表2 在干燥正己烷中制备的枯草杆菌蛋白酶Carlsberg的催化活性。沉淀是按2.0部分所述进行的,但采用溶解于水中的枯草杆菌蛋白酶,而不使用缓冲剂。
从表2可以看到,通常采用K2SO4作为共沉淀剂时,在正己烷中的活性要高于采用KCl作为共沉淀剂时的活性。而当将K2SO4的浓度降低至其饱和浓度的五分之一时,观察到活性也降低了。另外,如前所述,KCl-酶(水溶液)在乙腈(CH3CN)中沉淀时形成两相的混合物。在几乎所有的情况下,共沉淀剂-酶沉淀物的生物活性均高于冷冻干燥得到的粉末。
表3在含0.5%水的乙腈中制备的枯草杆菌蛋白酶Carlsberg和胰凝乳蛋白酶的催化活性,所述酶是按实施例1所述的方法,在缓冲剂存在下沉淀得到的。
a)chy=胰凝乳蛋白酶,sub=枯草杆菌蛋白酶从表3可以看到,在乙腈中共沉淀剂-酶沉淀物的活性大大地高于冷冻干燥法得到的粉末,而且也显示了较好的生物活性构造保持力。
氨基酸沉淀物的活性测定使用前述制备的每一个Eppendorf反应瓶(0.67mg酶)的沉淀物用来测试每一种酶的活性。以乙腈/1%H2O为溶剂,N-乙酰基-L-酪氨酸乙酯(10mM)和1-丙醇(1M)进行酯交换以后,用HPLC测定活性。
图9所示为各种氨基酸共沉淀剂与K2SO4相比,对枯草杆菌蛋白酶活性的影响。精氨酸可提高初始速率,而甘氨酸和赖氨酸在3小时后可略微提高最终的转化速率。谷氨酸的转化速率较低,而采用冻干法制备酶的转化速率则小于1%。所得到的结果可认为在有机溶剂中,氨基酸可能起到了一种固态酸-碱缓冲剂的作用。赖氨酸和甘氨酸通过副产物的水解作用可以吞掉质子。而谷氨酸则增加了枯草杆菌蛋白酶的质子化状态,使催化活性降低。实施例3 K2SO4-枯草杆菌蛋白酶Carlsberg的重新溶解及其在水溶液中的活性K2SO4-枯草杆菌蛋白酶的沉淀物可以迅速完全地重新溶解在缓冲剂中,说明在脱水过程中,并没有不可逆的变性发生。用以下方法测试水溶液中枯草杆菌蛋白酶Carlsberg的活性采用ρ-醋酸硝基苯酯(97%,Aldrich,Poole,U.K.)进行测定,在水解时其可以释放出发色的硝基苯酚。通过紫外光谱仪可以监控反应速度,检测波长(λ)=400nm。1ml石英杯,含有200μl 3mM的ρ-醋酸硝基苯酯溶液(97%,Aldrich,U.K.);800μl的tris缓冲剂(pH7.8)和一份K2SO4-枯草杆菌蛋白酶(20μl)重新溶解在缓冲剂溶液中(1mg/ml)。
将K2SO4-枯草杆菌蛋白酶的沉淀物在丙醇中悬浮72小时后,发现当重新溶解在水溶液中时,仍保留100%的活性。同样,将K2SO4-枯草杆菌蛋白酶的沉淀物风干两天后,也可迅速地溶解在水中,并仍具有100%的活性。采用ρ-醋酸硝基苯酯的定性试验也表明,K2SO4-枯草杆菌蛋白酶的沉淀物在P2O5(室温)中贮存3个星期后,很容易地溶解在缓冲溶液(pH7.8)中,并仍保持着催化活性。实施例4 酶沉淀物在丙醇中的活性中心滴定将约2mg的枯草杆菌蛋白酶Carlsberg和约18mg的硫酸钾溶解在200μl、2.5mM的Tris缓冲剂(pH7.8)中,按实施例1所述的方法,将所得的样品加入含1%水的3ml丙醇中,进行共沉淀。在颗粒沉降后,滗去大部分溶剂,然后用3ml同样的溶剂洗涤沉淀物一次。其中样品的一半,采用10mM甲苯磺酰基氟化物(PMSF)活性中心滴定剂的3ml丙醇溶液培育1小时。然后滗去大部分的滴定剂混合液,将固体物分别用每份3ml的纯丙醇洗涤3次。采用实施例3所述的标准测试方法,分别测定经PMSF处理和未处理样品在水溶液中的催化活性。然后将结果与那些非沉淀的枯草杆菌蛋白酶Carlsberg进行比较。测试结果表明,正常酶沉淀物保留>95%的活性,而经PMSF处理的酶显示<10%的最初活性。对照试验表明,洗涤操作有效地除去了过量的PMSF,而将沉淀物重新溶解在水中时,无明显的滴定反应发生。这说明蛋白质在经脱水并在溶剂中悬浮时,其催化活性的降低是由于用PMSF滴定酶活性中心引起的。该试验结果也证明在经过脱水和沉淀后,沉淀物中>90%的枯草杆菌蛋白酶分子仍保持生物活性构型。实施例5 透射电镜将标准的枯草杆菌蛋白酶/K2SO4的蛋白质-共沉淀剂颗粒悬浮于丙醇中,并将等量的悬浮液滴在涂碳的电镜栅格上。样品风干后,采用JeolJEM 1200EX透射电镜(Jeol Tokyo,日本)进行测试。
图1和2给出了所获得的典型的透射电镜照片。从照片中可以看到,蛋白质-共沉淀剂形成了规则形状的结晶。从比例尺(分别为500nm和200nm)中可以观察到,蛋白质-共沉淀剂颗粒的尺寸一般要小于2微米。在高度放大的照片中,可观察到在晶体上有一较薄的包层。可以认为这一包层是由蛋白质层构成的,该蛋白质是在结晶过程中从晶格中脱出的。如果没有任何的蛋白质,通过沉淀步骤也可以得到形状相似,但颗粒较大的结晶。
图3给出了蛋白质的聚集照片,其是在没有盐存在时枯草杆菌蛋白酶沉淀时形成的。它很容易地与蛋白质包膜的晶体(图4)进行比较,图4为枯草杆菌蛋白酶-K2SO4在1-丙醇中形成的共沉淀物。从图5中可以看出,如果将1-丙醇加入到枯草杆菌蛋白酶和K2SO4的水溶液中,则形成了蛋白质链连接在盐结晶之间的不同沉淀物结构(即蛋白质并没有包膜在结晶的表面)。实施例6 采用显微镜观察从枯草杆菌蛋白酶和K2SO4的混合物中得到的共沉淀物的表面从电子显微镜中可以观察到,按实施例1方法,从枯草杆菌蛋白酶和K2SO4的混合物中得到的共沉淀物具有规则的结晶晶体,晶体表面为较大的平面。因此,非常适用于采用扫描加载显微镜(SFM)方法来研究结晶表面的细致结构。如果结晶的表面是平面,那么扫描加载显微镜(SFM)则也可以用来研究结晶表面上的分子结构。在所述的研究中,还可以采用数字化超高频示波器原子力显微镜来检测共沉淀物,使用螺旋式扩大状态距离测定的方法。图6给出了一堆晶体的照片,其扫描尺寸为6μm×6μm和Z-高度为1.5μm。从图片中可以看到晶体具有非常均匀的尺寸,而且为规则的片状形状,并且具有扁平的表面。从相同比例的照片中可以看到没有蛋白质存在的K2SO4沉淀物的结晶尺寸也十分相似。从高分辨的照片中,可以观察到在蛋白质存在和不存在下K2SO4沉淀物的部分单晶表面。图7为典型的没有蛋白质存在时得到的400nm×400nm的晶体照片。在Z-轴4nm的范围观察,晶体的表面完全没有特征并且非常平坦。
图8为典型的盐与蛋白质共沉淀得到的500nm×500nm晶体的照片。在Z-轴15nm较大的范围内,可直接观察到晶体的表面是非常粗糙的。更近的观察可以发现,晶体的表面被一层纳米级的蛋白质颗粒所包覆。实施例7 胰岛素的沉淀从英国的Sigma公司购得得自牛胰腺的胰岛素(产品编号I-5500)。沉淀将2mg胰岛素溶解于200μl HCl(0.010M)中,并加入333μl的NaOH(0.010M)来增加pH值。将所得的胰岛素溶液与150μl饱和的K2SO4溶液进行混合,然后加入5.317ml含1.3%水的丙醇中进行沉淀。将所得的悬浮液进行离心分离,并用1-丙醇/1.3%水洗涤一次。得到很细的沉淀物颗粒,在外观上基本上与枯草杆菌蛋白酶沉淀物(见实施例1)相同。胰岛素的圆二色光谱在由PC机控制的JASCO J-600旋光分光计上测试下列样品。
从瓶中直接取出的胰岛素按上述方法制备的胰岛素与K2SO4的共沉淀物两者所得的光谱谱图十分相近,而且与文献报道的也很相近,这说明经过沉淀和重新溶解后,胰岛素基本上保持了其天然的结构。实施例8 DNA的沉淀从小牛胸腺提取的超纯的DNA-基因,平均分子量=8.6MDa,相当于13千碱基对(购于Sigma)。沉淀将0.5单位的DNA溶解于100μl中,并与300μl饱和的K2SO4溶液进行混合,然后加入到4.5ml 1-丙醇(预先用分子筛干燥)中,立即形成很细的沉淀物。将所得的悬浮液在摇动速度为600rpm下摇动2分钟,使其沉降,并在eppendorf中在6000rpm转速下进行离心分离。将含丙醇的上层清液除去,沉淀物重新溶解于1ml的10mM Tris-HCl缓冲剂(10mM,pH7.8)中,该缓冲剂中含有1mM EDTA和1mM NaCl。比较将DNA沉淀物和初始的DNA同样溶于1ml的Tris-HCl缓冲剂(10mM,pH7.8)中,该缓冲剂中含有1mM EDTA和1mM NaCl。所得溶液的浓度为0.5单位/ml,将两样品得到的紫外光谱图进行比较。
购于Sigma的从瓶中直接取出的样品在260nm处的吸收=0.421,在280nm处的吸收=0.219;在缓冲剂中重新溶解的沉淀物样品在260nm处的吸收=0.415,在280nm处的吸收=0.237。
通过以上数据表明,沉淀的方法是非常有效的,DNA的损失很少或没有损失。
本发明涉及蛋白质包膜的微晶及其制备方法,该蛋白质包膜的微晶具有以下用途:制备用于生物催化剂的酶;制备用于药物制剂的治疗蛋白质;生产含有酶的清洗剂;生产含有具有防护和/或防污性能蛋白质的油漆、清漆、涂料、薄膜等;生产含有蛋白质的薄膜、聚合物、墨水、涂料、电极和/或光学材料,其可用于诊断用具和/或生物传感器;使用蛋白质研究在非水介质中的分子识别、分子粘合、分子印刻或抑制剂粘合,以及制备蛋白质基食品添加剂。
蛋白质的快速脱水制作方法
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