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一种阻断乙肝病毒表达的方法

  • 专利名称
    一种阻断乙肝病毒表达的方法
  • 发明者
    裴瑞卿, 赵昕, 汪芳迅, 郭永, 尹鸿瑛, 程京
  • 公开日
    2004年9月8日
  • 申请日期
    2003年3月5日
  • 优先权日
    2003年3月5日
  • 申请人
    北京博奥生物芯片有限责任公司, 清华大学
  • 文档编号
    A61P31/00GK1526818SQ0311922
  • 关键字
  • 权利要求
    1.一种阻断乙肝病毒表达的方法,其特征在于使用RNAi方法阻断乙肝病毒在人肝细胞中的表达2.根据权利要求1所述的阻断乙肝病毒表达的方法,其特征在于所述RNAi方法中的siDNA为序列表中下述四组核苷酸片断SEQ ID № I、SEQ ID № II、SEQ IDNo III和SEQ ID № IV3.根据权利要求1所述的阻断乙肝病毒表达的方法,其特征在于所述RNAi方法中的siDNA为序列表中下述四组核苷酸片断SEQ ID № V、SEQ ID № VI、SEQ ID№ VII和SEQ ID № VIII4.根据权利要求1所述的阻断乙肝病毒表达的方法,其特征在于所述RNAi方法中的siDNA为序列表中下述四组核苷酸片断SEQ ID № IX、SEQ ID № X、SEQ ID№ XI和SEQ ID № XII5.根据权利要求1所述的阻断乙肝病毒表达的方法,其特征在于所述RNAi方法中的siDNA为序列表中下述四组核苷酸片断;SEQ ID № XIII、SEQ ID № XIV、SEQ ID № XV和SEQ ID No XVI6.一种包含权利要求2、3、4或5所述siDNA的质粒7.根据权利要求6所述的质粒,其特征在于所述质粒为siDNA-1-pBS/U6-GFP,siDNA-2-pBS/U6-GFP,siDNA-3-pBS/U6-GFP和siDNA-4-pBS/U6-GFP8.一种构建权利要求7所述质粒的方法将siDNA序列由设计在序列中的HindIII酶切位点连接,连接后的片断插入到pBS/U6质粒中的ApaI和EcoRI的酶切位点之间,得到目的质粒9.根据权利要求8所述的方法,其特征在于所述质粒中还包括GFP标记;所述GFP片断插入到siDNA的3’末端的SmaI位点上10.根据权利要求8或9所述的方法,其特征在于所述siDNA选自siDNA-1、siDNA-2、siDNA-3或siDNA-4中的任意一种11.一种包含权利要求6、7、8、9所述siDNA的的细胞系
  • 技术领域
    本发明涉及基因工程领域中一种阻断乙肝病毒表达的方法
  • 背景技术
  • 专利详情
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  • 权力要求
  • 说明书
  • 法律状态
专利名称:一种阻断乙肝病毒表达的方法 乙型肝炎由乙肝病毒(HBV)感染引起,是病毒感染性疾病中最普遍的一种,是一种世界性分布的疾病。在东南亚和非洲部分地区感染率高达20%,估计世界范围内有2-3亿的HBV携带者。慢性HBV在成人中有1-10%的发病率,儿童中更高,在HBeAg阳性的母亲所生的婴儿中感染率为100%。HBV是一种直径为42nm小型嗜肝DNA病毒(hepatotropic DNA virus),由外面的包被和核心组成。表面抗原是HBV包被的主要成分,并作为诊断HBV感染的主要指标。HBV病毒的核心由核心抗原(HBcAg)、DNA聚合酶/反转录酶和病毒基因组组成。HBV基因组大小为3,200bp,其部分基因及其编码产物如表1所示。表1、HBV基因组部分基因及其编码产物 乙肝病毒(HBV)的感染是导致慢性肝炎、肝硬化并转化为肝癌的主要原因。对HBV感染的研究已经比较深入,这包括针对HBV急性和慢性感染的研究。目前在某些病人中对HBV感染的治疗方法主要是用干扰素-α和-β,或与合成的抗病毒药物或其它药物合用,也可用基因疗法。但是不同病人(包括急性和慢性乙肝病人)来源的HBV的基因组有较大程度的突变,这种基因差异给乙肝病毒的治疗带来了很大的困难。最近几年新兴的、特别是在哺乳动物抗病毒研究中应用的RNA干扰(RNAi)技术能高效阻断某个特定基因的表达,其研究成果,如对阻断HIV表达方面的研究(Lee,N,S.,Dohjima,T.,Bauer,G.,Li,H.,Li,M.J.,Ehsani,A.,Dalvaterra,P.and Rossi,J.(2002)Nature Biotechnology,19,500-505),和另一类导致肝硬化的HCV的研究(Kapadia,S.B.,Brideau-Andersen,A.and Chisari,F.V.(2003)Proc.Natl.Acad.Sci.USA,100,2014-2018)等已经在RNAi领域引起了巨大反响。RNAi最初是在植物、线虫(Caenorhabditis elegans)和果蝇(Drosophila)中发现的一种抗病毒的机制,即转录后的基因沉默机制(PTGS)。它是由双链RNA(dsRNA)诱导出的现象。在这个过程中,1)dsRNA被一种类似于RNaseIII的酶(被称作Dicer)切成21-23nt(nucleotide)的双链RNA即siRNA(Cullen,B.R.(2002)Nat.Immunol.3,597-599;Hannon,G.J.(2002)Nature 418,244-251;Tuschl,T.(2001)Chembiochem 2,239-245;Sharp,P.A.(2001)Genes Dev.15,485-490;Moss,E.G.(2001)Curr.Biol.11,R772-R775);2)这些siRNA小分子与一种蛋白质复合物,也被称为RNA-诱导的沉默复合物(RNA induced silencing complex,RISC)特异性结合;3)RISC直接结合于与此siRNA核酸序列同源的mRNA部位上(例如HBV转录后形成的mRNA上);4)目的mRNA在与21-23nt同源部分的中间被切断,从而降解而失去功能(Cullen,B.R.(2002)Nat.Immunol.3,597-599;Hannon,G.J.(2002)Nature 418,244-251;Tuschl,T.(2001)Chembiochem 2,239-245;Sharp,P.A.(2001)Genes Dev.15,485-490;Moss,E.G.(2001)Curr.Biol.11,R772-R775)。RNAi作用的最大特点是它非常专一的抑制与其序列同源的基因序列,而对其它无关序列毫无影响。近年来,RNAi技术正在广泛地应用于特别是由于病毒引起的疾病,被称为“一种全新的、激动人心的新技术”(Song,E.,Lee,S.K.,Wang,J.,Ince,N.,Ouyang,N,Min,J.,Chen,J.,Shankar,P.,and Lieberman,J.(2003)Nature Medicine;10.1038/nm828)。RNAi在动物体中同样存在(Cullen,B.R.(2002)Nat.Immunol.3,597-599;Yu,J.Y.,DeRuiter,S.L.and Turner,D.L.(2002)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 99,6047-6052;Brummelkamp,T.R.,Bernards,R.and Agami,R.(2002)Science 296,550-553;Sui,G.,Soohoo,C.,Affarel,B.,Gay,F.,Y.andForrester,W.C.(2002)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 99,5515-5520),例如它可以阻断HCV(hepatitis C virus),HIV-1(human immunodeficiency virus-1),FHV(flock house virus),Rous sarcoma virus,dengue virus和poliovirus等病毒的表达(Kapadia,S.B.,Brideau-Andersen,A.and Chisari,F.V.(2003)Proc.Natl.Acad.Sci.USA,100,2014-2018),但这些病毒多是RNA病毒,而HBV是双链DNA病毒。


本发明的目的是提供一种阻断乙肝病毒表达的方法。
本发明提供的阻断乙肝病毒表达的方法是使用RNAi技术阻断乙肝病毒HBV在人肝细胞中的表达。
本发明提供了四组siDNA序列1)siDNA-1SEQ ID № I(正义链1a)5’GGCTGCTATGCCTCATCTTCTA 3’SEQ ID № II(反义链1b)5’AGCTTAGAAGATGAGGCATAGCAGCC 3’SEQ ID № III(正义链2a)5’AGCTTAGAAGATGAGGCATAGCAGCCCTTTTTG 3’SEQ ID № IV(反义链2b)5’AATTCAAAAAGGGCTGCTATGCCTCATCTTCTA 3’2)siDNA-2SEQ ID № V(正义链1a)5’GGCCTATGGGAGTGGGCCTCAA 3’SEQ ID № VI(反义链1b)5’AGCTTTGAGGCCCACTCCCATAGGCC 3’SEQ ID № VII (正义链2a)5’AGCTTTGAGGCCCACTCCCATAGGCCCTTTTTG 3’SEQ ID № VIII(反义链2b)5’AATTCAAAAAGGGCCTATGGGAGTGGGCCTCAA 3’3)siDNA-3SEQ ID № IX(正义链1a)5’GGAAGCCTCCAAGCTGTGCCTA 3’SEQ ID № X(反义链1b)5’AGCTTAGGCACAGCTTGGAGGCTTCC 3’SEQ ID № XI(正义链2a)5’AGCTTAGGCACAGCTTGGAGGCTTCCCTTTTTG 3’SEQ ID № XII(反义链2b)5’AATTCAAAAAGGGAAGCCTCCAAGCTGTGCCTA 3’4)siDNA-4SEQ ID № XIII(正义链1a)5’GGAAGAAGAACTCCCTCGCCTA 3’SEQ ID № XIV(反义链1b)5’AGCTTAGGCGAGGGAGTTCTTCTTCC 3’SEQ ID № XV(正义链2a)5’AGCTTAGGCGAGGGAGTTCTTCTTCCCTTTTTG 3’SEQ ID № XVI(反义链2b)5’AATTCAAAAAGGGAAGAAGAACTCCCTCGCCTA 3’包含上述四组DNA的质粒及细胞系均属于本发明的保护范围。具体的质粒为siDNA-1,-2,-3和-4-pBS/U6-GFP。
质粒siDNA-1,-2,-3和-4-pBS/U6-GFP的通用结构如图2所示。
质粒siDNA-1,-2,-3和-4-pBS/U6-GFP的构建方法为分别将siDNA-1、siDNA-2、siDNA-3、siDNA-4的正义链1a/反义链1b和正义链2a/反义链2b之间由设计在序列中的HindIII酶切位点连接,连接后的片断分别插入到pBS/U6质粒中的ApaI和EcoRI的酶切位点之间。GFP(绿色荧光蛋白,green fluorescence protein)片断插入到siDNA的3’末端的SmaI位点上。
本发明提供了四种siDNA核苷酸序列,并在质粒pBS/U6的基础上,将质粒改造为可表达GFP的质粒,与共转染相比,可以作为更好的siDNA转染标记。
本发明筛选的含有siDNA的稳定细胞系将对用RNAi技术治疗HBV感染的下一步研究提供不可缺少的实验材料,也属于本发明的保护范围。并将在乙肝病毒的治疗中起到重要作用。


图1用于克隆siDNA的pBS/U6质粒图谱图2质粒siDNA-1,-2,-3和-4-pBS/U6-GFP的通用结构图谱图3为经过FACS(Fluorescence-Activated Cell Sorting)对含有荧光-siDNA的HepG2.2.15细胞分离后的可见光和荧光显微镜观察4为经过不同siDNA转染的细胞所产生的HBV表面抗原的相对浓度与时间的关系曲线图5为不同细胞所产生的HBV表面抗原的相对浓度直方图
材料细胞及质粒1、质粒的构建是以E.coli DH5α为宿主进行的;2、HBV阳性细胞系为HepG2.2.15;3、用于克隆siDNA的质粒为pBS/U6,其图谱见附图1;4、GFP(绿色荧光蛋白,green fluorescence protein)cassette是从InvitrogenLife Technology的pCR3.1-Uni中克隆出来,它包括GFP的功能区(753bp)及其两侧的从PCMV到“BGH polyadenylation”之间的1739bp,同时在GFP序列前添加了NLS(nucleic-location-site)序列区。
实施例1、siDNA(small interfering DNA)的设计从GenBankTM得到不同来源的HBV的DNA序列共计19套,其GenBankTM序号见表2表2、用于设计siDNA的HBV序列(GenBankTM序号)


对上述19套HBV的DNA序列进行同源性分析,以其共有的保守区(长度大于19nt)设计siDNA。共设计了4套siDNA,设计原则为1、天然U6启动子,包含3个G,转录从此起始,这三个G在RNAi构建中被改造,作为siRNA的一部分。在pBS/U6载体中,在U6启动子后,紧跟着一个ApaI(GGGCCC)位点。用ApaI对pBS/U6载体酶切消化,用Klenow或T4-DNA聚合酶切成平端,还留下一个G,因此为了将2个G放回去,第一个oligo(oligo 1a)应该以“GG”开始,第二个oligo(即互补的oligo 1b)应该以“CC”结束。
2、在第二对oligo中,oligo 2a应该有“CCC”,“CCC”后应该是“TTTTT”(用于Pol III转录终止)和一个EcoR I酶切位点(用于将oligo亚克隆到载体中)。在oligo 2b中,需要有“GGG”和EcoR I酶切位点。
3、在两对oligo之间,用HindIII来连接,因此所有四个oligo都需要有HindIII识别序列。
4、确定所设计的oligo中没有EcoR I位点和Hind III位点,如果有,选择其它酶切位点来进行亚克隆。下面是用来构建各个RNAi载体的oligo的格式Oligo 1a 5’GG….A 3’Oligo 1b 3’CC….TTCGA 5’Oligo 2a 5’AGCTT….CCC TTTTT G 3’
Oligo 2b 3’A….GGG AAAAA CTTAA 5’其中Oligo 1a,1b反向互补,Oligo 2a,2b反向互补;1a和2b的基因组DNA(与需阻断的基因组内同源的序列)相同,2a和1b的基因组DNA的序列相同。这样最终得到的siDNA,是一个完全的反向重复,转录出来的这个RNA将折叠成发卡结构,可以很好地作为siRNA起作用。用于设计siDNA的HBV保守序列如表3所示表3、用于设计siDNA的HBV保守序列

*P聚合酶1-1626(P-1)and 2310-3215(P-2);HBsAg表面抗原(LHBS,MHBS,HBsAg)1-838 and 2851-3215;HBeAgCore1817-2455;X-protein1377-1841。数字表示核苷酸在基因组中的位置。
所设计的siDNA为1)siDNA-1SEQ ID № I(正义链1a)5’GGCTGCTATGCCTCATCTTCTA 3’SEQ ID № II(反义链1b)5’AGCTTAGAAGATGAGGCATAGCAGCC 3’SEQ ID № III(正义链2a)5’AGCTTAGAAGATGAGGCATAGCAGCCCTTTTTG 3’SEQ ID № IV(反义链2b)5’AATTCAAAAAGGGCTGCTATGCCTCATCTTCTA 3’2)siDNA-2SEQ ID № V(正义链1a)5’GGCCTATGGGAGTGGGCCTCAA 3’SEQ ID № VI(反义链1b)5’AGCTTTGAGGCCCACTCCCATAGGCC 3’SEQ ID № VII(正义链2a)5’AGCTTTGAGGCCCACTCCCATAGGCCCTTTTTG 3’SEQ ID № VIII(反义链2b)5’AATTCAAAAAGGGCCTATGGGAGTGGGCCTCAA 3’3)siDNA-3SEQ ID № IX(正义链1a)5’GGAAGCCTCCAAGCTGTGCCTA 3’SEQ ID № X(反义链1b)5’AGCTTAGGCACAGCTTGGAGGCTTCC 3’SEQ ID № XI(正义链2a)5’AGCTTAGGCACAGCTTGGAGGCTTCCCTTTTTG 3’SEQ ID № XII(反义链2b)5’AATTCAAAAAGGGAAGCCTCCAAGCTGTGCCTA 3’4)siDNA-4SEQ ID № XIII(正义链1a)5’GGAAGAAGAACTCCCTCGCCTA 3’
SEQ ID № XIV(反义链1b)5’AGCTTAGGCGAGGGAGTTCTTCTTCC 3’SEQ ID № XV(正义链2a)5’AGCTTAGGCGAGGGAGTTCTTCTTCCC TTTTTG 3’SEQ ID № XVI(反义链2b)5’AATTCAAAAAGGGAAGAAGAACTCCCTCGCCTA 3’实施例2、质粒的构建分别将siDNA-1、siDNA-2、siDNA-3、siDNA-4的正义链1a/反义链1b和正义链2a/反义链2b之间由设计在序列中的HindIII酶切位点连接,连接后的片断插入到pBS/U6质粒中的ApaI和EcoRI的酶切位点之间。GFP(绿色荧光蛋白,greenfluorescence protein)片断插入到siDNA的3’末端的SmaI位点上,经过DNA序列测定,证明所克隆的siDNA片断已经正确插入,可用于转染人肝细胞系HepG2.2.15(质粒的结构见附图2)。用于质粒克隆的宿主为E.coliDH5α,培养基为添加0.1g/lAmpicillin(青霉素(Sigma))的LB培养基。
实施例3、siDNA-pBS/U6-GFP的转染1.HBV阳性的人肝细胞系HepG2.2.15用添加10%FBS的DMEM(GIBCO)高糖培养基,在含5%CO2的37℃培养箱中静置培养。
2.siDNA-pBS/U6-GFP质粒转染是用Effectene Transfection Reagent(QIAGEN)试剂盒完成的,具体操作如下(1)转染前24小时在含10%血清(FBS)的DMEM培养基的六孔板上接种约0.5-2×105个HBV阳性的人肝细胞系HepG2.2.15细胞,37℃培养至转染前;(2)转染前观察细胞生长正常,并且密度在40-80%饱和度之间;(3)在1.5ml离心管中将0.4μg siDNA-pBS/U6-GFP质粒DNA(浓度不低于0.1μg/μl)用pH7-8的TE溶解,加入Buffer EC至终体积100μl,加入3.2μl Enhancer,振荡器振荡1秒钟;(4)室温(15-25℃)放置2-5分钟,稍加离心,将管壁上的液滴甩下来;(5)加入10μl Effectene Transfection Reagent,用移液枪上下吹吸5次;(6)室温放置5-10分钟以形成转染复合体;(7)在放置5-10分钟期间,将6孔板中阳性的人肝细胞系HepG2.2.15细胞培养上清液吸去,用2ml PBS洗细胞一次,加入1.6ml新鲜培养基;(8)加入600μl培养基到转染复合体中,用移液枪上下吹吸2次,将转染复合物迅速滴加到六孔板的细胞上,轻轻混合均匀,37℃继续培养;(9)如果出现细胞毒性,在转染后6-18小时弃去培养基,用PBS冲洗一次,换上新鲜培养基。
实施例4、FACS(Fluorescence-Activated Cell Sorting)分选细胞和荧光观察转染前后的细胞用LEICA MPS60(Solms,Germany)荧光显微镜观察并采集图像。经转染的细胞在荧光显微镜下可见明显的绿色荧光。经过siDNA-pBS/U6-GFP转染的HepG2.2.15细胞经48h培养后用FACSDiva仪器(Becton Dickinson Bioscience,IOWA,USA)分离带有GFP荧光的细胞(即带有siDNA的细胞)并收集起来,继续培养。结果如图3所示,表明FACS技术可有效地将带有GFP(即带有siDNA)的细胞分选出来。
实施例5、经过不同siDNA转染的细胞所产生的HBV表面抗原的相对浓度与时间的关系以HBV阳性的人肝细胞系HepG2.2.15和只含pBS/U6-GFP(不含siDNA)质粒的HBV阳性的人肝细胞系HepG2.2.15细胞作为对照细胞。用含有不同siDNA的质粒转染HBV阳性的人肝细胞系HepG2.2.15细胞,经过48h培养后,根据细胞是否含有荧光,用FACS技术将含有荧光的细胞分离并收集起来,继续培养,同时与培养的对照细胞一起,在不同的培养时间,取培养上清液,用“乙肝表面抗原测定试剂盒S-01”(英科新创,厦门,中国)根据厂家提供的ELISA方法测定上清液中的HBV表面抗原HBsAg含量,以测定不同siRNA对HBV表达的抑制程度。
结果如图4所示,表明不同细胞所产生的HBsAg的量,随着培养时间的延长而增高。其中两个对照细胞HBV阳性的人肝细胞系HepG2.2.15和只含pBS/U6(不含siDNA)质粒的HBV阳性的人肝细胞系HepG2.2.15细胞所产生的sAg增高程度相近,并且作为对照,计算siRNA的抑制率;而经不同siDNA(siDNA-1,-2和-4)--pBS/U6-GFP转染的细胞与对照细胞相比,产生HBsAg的速度明显减慢,产生量也有不同程度的明显下降。这说明了不同siRNA对HBV表面抗原的表达有不同程度的抑制作用。图4中,所标的时间是经FACS分离后细胞培养的时间;HepG2.2.15是未经过任何质粒转染的、HBV阳性的稳定细胞系;pBS/U6是不含有siDNA的、经过pBS/U6-GFP转染的HepG2.2.15细胞;siRNA-1,-2,-4分别代表经过siDNA-1,-2和-4-pBS/U6-GFP质粒转染的HepG2.2.15细胞。
实施例6、不同siRNA对HBV表面抗原表达的抑制效率用不同siDNA转染的HepG2.2.15细胞、经FACS分离后培养120h,用FACS技术将含有荧光的细胞收集起来,与培养120h的HBV阳性的人肝细胞系HepG2.2.15和培养120h的只含pBS/U6(不含siDNA)质粒的HBV阳性的人肝细胞系HepG2.2.15细胞共同测量HBV表面抗原HBsAg含量,测定方法同实施例5。结果如图5所示,图中,HepG2.2.15是未经过任何质粒转染的、HBV阳性的稳定细胞系;pBS/U6是不含有siDNA的、经过pBS/U6-GFP转染的HepG2.2.15细胞;siRNA-1,-2,-3,-4分别代表经过siDNA-1,-2,-3和-4-pBS/U6-GFP质粒转染的HepG2.2.15细胞。
图5的结果如表4所示,表明,siRNA-1对HBV表面抗原的抑制率可达80%,其次为siRNA-3为60%;siRNA-2和-4也分别对HBsAg的产生有明显的抑制作用,其抑制率分别为21.9%和39%。其中以不含siDNA的、经pBS/U6-GFP转染的细胞作为对照。
表4、不同siRNA对HBV表面抗原表达的抑制效率。

*未列入说明书附图4、5。
序列表<160>16<210>1<211>22<212>DNA<213>人工序列<220>
<223>
<400>1ggctgctatg cctcatcttc ta22<210>2<211>26<212>DNA<213>人工序列<220>
<223>
<400>2agcttagaag atgaggcata gcagcc26<210>3<211>33<212>DNA<213>人工序列<220>
<223>
<400>3agcttagaag atgaggcata gcagcccttt ttg33<210>4<211>33<212>DNA<213>人工序列
<220>
<223>
<400>4aattcaaaaa gggctgctat gcctcatctt cta33<210>5<211>22<212>DNA<213>人工序列<220>
<223>
<400>5ggcctatggg agtgggcctc aa22<210>6<211>26<212>DNA<213>人工序列<220>
<223>
<400>6agctttgagg cccactccca taggcc26<210>7<211>33<212>DNA<213>人工序列<220>
<223>
<400>7agctttgagg cccactccca taggcccttt ttg33<210>8<211>33<212>DNA
<213>人工序列<220>
<223>
<400>8aattcaaaaa gggcctatgg gagtgggcct caa33<210>9<211>22<212>DNA<213>人工序列<220>
<223>
<400>9ggaagcctcc aagctgtgcc ta22<210>10<211>26<212>DNA<213>人工序列<220>
<223>
<400>10agcttaggca cagcttggag gcttcc26<210>11<211>33<212>DNA<213>人工序列<220>
<223>
<400>11agcttaggca cagcttggag gcttcccttt ttg33<210>12
<211>33<212>DNA<213>人工序列<220>
<223>
<400>12aattcaaaaa gggaagcctc caagctgtgc cta33<210>13<211>22<212>DNA<213>人工序列<220>
<223>
<400>13ggaagaagaa ctccctcgcc ta22<210>14<211>26<212>DNA<213>人工序列<220>
<223>
<400>14agcttaggcg agggagttct tcttcc26<210>15<211>33<212>DNA<213>人工序列<220>
<223>
<400>15agcttaggcg agggagttct tcttcccttt ttg33
<210>16<211>33<212>DNA<213>人工序列<220>
<223>
<400>16aattcaaaaa gggaagaaga actccctcgc cta3

本发明公开了一种阻断乙肝病毒表达的方法。目的是能够通过该方法使乙肝病毒的表达阻断。本发明提供的阻断乙肝病毒表达的方法是使用RNAi技术阻断乙肝病毒HBV在人肝细胞中的表达。具体提供了四组siDNA序列,并提供了包含上述四种siDNA的质粒siDNA-1,-2,-3和-4-pBS/U6-GFP及其构建方法。本发明将RNAi技术用于阻断乙肝病毒的表达,将在乙型肝炎的治疗中起到重要作用。



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