基于留置针的循环肿瘤细胞在体捕获装置及方法[0002]几十年前人们就已经认识到癌症的转移很大程度上是由于原位癌将癌细胞播散到血液里，由血液携带至其他器官，从而形成新的肿瘤。目前，对于循环肿瘤细胞(circulating tumor cells, CTCs)的捕获与检测已经被用作一种新的液体诊断方法,用于追踪癌症的扩散或者预测治疗的预后效果。迄今为止，几乎所有关于CTCs捕获与检测的方法都是基于从血液中取若干毫升样品，进而捕获检测此样品中的CTCs。分析化学中取样的基本规律是样品要具有代表性，而CTCs的播散是无规律的，间或会有一团细胞播散到血液中，因此血液中CTCs的分布是不均匀的。这势必会导致随机从血液中取到的样品是不具有代表性的，从而会造成此类基于取样的检测方法极有可能出现假阴性。即便所建立的检测方法能检测到I毫升血液里的I个细胞，相对于全身血液中CTCs的不均匀分布来说，这也不是一个准确的结果。因此，有必要研发一种更加准确有效的捕获与检测方法。
[0003]针对上述关于CTCs捕获与检测方法的研究现状，本发明提供了一种基于留置针的循环肿瘤细胞在体捕获装置及方法。可用于对CTCs实现更加准确有效的检测。[0004]本发明是通过以下技术方案实现的:[0005]一种基于留置针的循环肿瘤细胞在体捕获装置，包括留置针，留置针外表面包覆有可吸附蛋白的材料，可吸附蛋白的材料上吸附有用于特异性识别与捕获循环肿瘤细胞的上皮细胞特异性抗体。[0006]所述留置针，是指可以用于输液、并能在体内留置Ih以上的所有不同规格、类型的输液针。[0007]所述可吸附蛋白的材料，是指可以通过共价偶联、氢键作用、疏水作用或者分子间作用力等吸附蛋白质的材料，优选聚二甲基硅氧烷(Poly (dimethylsiloxane) ,PDMS)。可吸附蛋白的材料可以物理附着在留置针外表面。
[0008]所述上皮细胞特异性抗体,包括针对循环肿瘤细胞表面特异性抗原的所有抗体种类，可以是多克隆抗体、单克隆抗体或重组抗体，以及核酸适配体。
[0009]所述上皮细胞特异性抗体，根据需要捕获的目标肿瘤细胞而选择，比如:需要捕获乳腺癌细胞时，可选用抗上皮细胞粘附分子(Epithelial cell adhesion molecule,EpCAM)抗体。
[0010]所述基于留置针的循环肿瘤细胞在体捕获装置的制备方法为:
[0011] (I) PDMS包覆:PDMS前体液及其固化剂(PDMS前体液及其固化剂都是现有技术中已有的常规产品)按体积比5:1比例混合均匀，得混合液，然后将留置针浸没于该混合液中，顺时针旋转留置针I周以上使包覆均匀，然后取出，置于65°C干燥箱中固化3小时，得包覆有PDMS的留置针；
[0012](2)抗体的吸附:将包覆有PDMS的留置针浸没于浓度为I~500 μ g.mL—1的(优选100μ g.ml-1)上皮细胞特异性抗体溶液中，轻轻振摇2小时(目的是使上皮细胞特异性抗体充分吸附在PDMS上)，取出后用PBS缓冲液清洗3次，置于4°C环境下保存，待用。
[0013]利用上述基于留置针的循环肿瘤细胞在体捕获装置捕获循环肿瘤细胞的方法:利用基于留置针的循环肿瘤细胞在体捕获装置给携带有目标循环肿瘤细胞的癌症患者输液时，在输液过程中，癌症患者血管中的循环肿瘤细胞即被留置针上修饰的特异性抗体捕获；输液过程完成后，将留置针拔出，即可将捕获的循环肿瘤细胞清除出体外，用洗脱液洗脱，即可将循环肿瘤细胞洗下，洗脱下来的细胞可以置于显微镜(光学显微镜或激光共聚焦显微镜)下观察计数，或针对细胞内待测目标分子做免疫染色，共聚焦显微镜观测。
[0014]所述洗脱液，选自磷酸盐缓冲溶液(pH7.4,0.1mol.L—1)、甘氨酸缓冲溶液(pH2.7，
0.1mol.I71)或氢氧化钠溶液(pH13.6,0.4mol.L-1)。
[0015]本发明的基于留置针的循环肿瘤细胞在体捕获装置及方法，留置针采用上皮细胞特异性抗体修饰，可以实现对目标细胞高选择性和高特异性的捕获。临床采用此种经过修饰的留置针输液时，即可同时实现对循环肿瘤细胞的捕获。输液完成后，留置针拔出时即可将捕获的循环肿瘤细胞清除出体外。在体外将留置针上的循环肿瘤细胞洗脱后，即可对肿瘤细胞进行各种目的的检测(早期诊断、治疗反应等)。本发明的基于留置针的循环肿瘤细胞在体捕获方法，无需抽血，对人体不会造成任何额外伤害，成本低廉且高效，操作简单，可用于癌症患者的早期诊断及治疗反应的预测。

[0016]下面结合实施例对本发明作进一步的说明。
[0017]实施例1
[0018]一种基于留置针的循环肿瘤细胞在体捕获装置，包括留置针，留置针外表面包覆有PDMS，PDMS上吸附有用于特异性识别与捕获循环肿瘤细胞的上皮细胞特异性抗体(目标循环肿瘤细胞为MCF-7细胞，所选用的上皮细胞特异性抗体为抗EpCAM抗体，购自北京博奥森生物技术有限公司)。
[0019]所述留置针的规格型号，为24GX0.75 "，0.7_X19mm。
[0020]所述基于留置针的循环肿瘤细胞在体捕获装置的制备方法为:
[0021](I)PDMS包覆:PDMS前体液及其固化剂按体积比5:1比例混合均匀，得混合液，然后将留置针浸没于该混合液中，顺时针旋转留置针使包覆均匀，然后取出，置于65°C干燥箱中固化3小时，得包覆有PDMS的留置针；
[0022](2)抗体的吸附:将包覆有PDMS的留置针浸没于100 μ g -ml-1的上皮细胞特异性抗体溶液中，轻轻振摇2小时，取出后用PBS缓冲液清洗3次，置于4°C环境下保存，待用。
[0023]试验例:选取兔子和小鼠两种动物作为循环肿瘤细胞在体捕获的实验动物，以可商业化购得的乳腺癌细胞株一MCF-7为例，验证在体捕获方法的有效性。
[0024]为了考察动物免疫系统对注入MCF-7细胞的清除作用，选取免疫缺陷的裸鼠用于在体捕获实验。将配制好的含有一定MCF-7细胞数(具体见表1)的溶液，分别注入兔左耳耳缘静脉，小鼠、裸鼠尾部一条静脉中，将实施例1制备的经过修饰的留置针刺入兔右耳耳缘静脉，小鼠、裸鼠尾部另一条静脉中，3小时后将留置针取出，用pH为2.7、浓度为
0.1mol.L—1的Gly-HCl溶液将捕获的MCF-7细胞从留置针上洗脱至酶标板的孔中，置于显微镜下观测，计数细胞数。
[0025]表1统计了添加不同细胞数时实际捕获的细胞数及捕获效率。由表1可见，注入兔子、小鼠及裸鼠的不同数目的MCF-7细胞均可被成功捕获，由于留置针表面面积及对细胞的吸附容量限制，捕获效率随添加细胞数增加而降低，由于病人血液中的循环肿瘤细胞数目非常少，因此，此方法用于临床检测时，这种捕获效率的降低不会产生实质性的影响。由于裸鼠有免疫缺陷，注入裸鼠静脉的MCF-7不会被免疫系统破坏，因此留置针用于裸鼠的捕获效率远高于野生小鼠，这也进一步验证了本方法的可行性。由于留置针表面修饰有抗体，起到了对PDMS吸附位点的封闭作用，可大大降低非特异性吸附，实验发现，经修饰的留置针不会比未经PDMS包被及抗体吸附的留置针吸附出更多的红细胞与白细胞。
[0026]表1