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一种微生物催化不对称水解制备(-)γ-内酰胺的方法

  • 专利名称
    一种微生物催化不对称水解制备(-)γ-内酰胺的方法
  • 发明者
    倪晔, 薛天芸, 陈红干
  • 公开日
    2012年10月10日
  • 申请日期
    2012年6月13日
  • 优先权日
    2012年6月13日
  • 申请人
    江南大学
  • 文档编号
    C12N1/20GK102719378SQ20121019363
  • 关键字
  • 权利要求
    1.一株产高对映选择性(+) Y-内酰胺酶酶活的菌株,其分类命名为戴尔福特菌(.Delftia sp. ) JNU-GL,已保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏编号为 CGMCC No. 57552.一种用权利要求I所述菌株微生物立体选择性水解外消旋(±) Y-内酰胺,制备(-)Y-内酰胺的方法,其特征在于,采用具有立体选择性(+) Y-内酰胺酶酶活的微生物菌株,在水相体系中,以(±) Y-内酰胺为底物,进行不对称水解拆分制备(_) Y-内酰胺,步骤如下 (1)微生物菌株戴尔福特菌sp.) CGMCC No. 5755 ; (2)微生物发酵培养条件优化的培养基组成以g/L 计为蔗糖5- 100,蛋白胨5 -50,牛肉膏 5 — 50,乙酰胺 5 — 150,MgSO4 0. 5 — 5,NaH2PO4 I — 10,Na2HPO4 I — 10,pH4—10 ;培养温度20 — 40°C ;培养时间I 一 3天,将发酵液尚心获得湿菌体; (3)反应体系的配制以(±)Y-内酰胺为底物,用pH 4— 10,0.01 - 0.5 M磷酸盐缓冲液水相反应体系,底物浓度为2 g/L - 600 g/L; (4)全细胞生物催化反应在步骤(3)的单一水相反应体系中,加入5g/L - 100 g/L湿菌体,反应温度为25 - 45°C,反应时间为2 — 24 h,摇床转速为100 — 300 rpm ; (5)转化液的处理和分析微生物催化反应之后的转化液,离心除去菌体,上清液采用乙酸乙酯萃取,加适量无水硫酸镁干燥后,进行手性HPLC检测; (6)产物的分离提取采用乙酸乙酯萃取产物,无水硫酸镁干燥,在30— 80°C下蒸发浓缩,-20 - 4°C下冷却结晶,得到高纯度的(_) Y-内酰胺,光学纯度95. 0% - 99. 9%,化学纯度为 95% — 99%o
  • 技术领域
    本发明涉及一种利用微生物立体选择性水解外消旋体(±) Y-内酰胺制备(-)Y-内酰胺的方法,属于生物工程技术领域
  • 背景技术
  • 具体实施例方式
    下面对本发明的
  • 专利详情
  • 全文pdf
  • 权力要求
  • 说明书
  • 法律状态
专利名称:一种微生物催化不对称水解制备(-)γ-内酰胺的方法光学纯(-)_ Y -内酰胺是重要的医药中间体。抗艾滋病药(-)abacavir和(-)carbovir均能以(_) _ Y _内酰胺为原料进行合成,以(_) _ Y _内酰胺为光学中间体,还可以合成抗流感药物帕拉米韦[王建军等微生物学报,50 (8) : 988-994,2010]。由于上述手性药物的需求量不断增加,作为重要手性中间体的光学纯(-)_ Y-内酰胺制备研究越来越受到人们的关注。目前已有的制备方法包括化学合成法和生物拆分法。化学法制备(_)Y-内酰胺的主要问题为副产物多、产率低、制备成本高、步骤繁琐等,从而使得最终的产品 含量低,不能满足制药要求。生物拆分(±) Y-内酰胺主要是利用具有立体选择性的酶对(±) Y-内酰胺选择性拆分而得到(_) Y-内酰胺,具有反应条件温和,立体选择性好,产物光学纯度高,且不污染环境等诸多优点,有广泛的应用前景。有关该方法的研究主要集中在筛选高对映选择性的(+) Y -内酰胺酶的产生菌株。Brabban热Mahmoudian等以N-乙酰苯丙氨酸为唯一碳源,筛选得到了产(+) Y-内酰胺酶菌株荧光假单胞菌,将来源于该菌的(+) Y _ 内酸胺酶进行了分离纯化[Mahmoudian M, et al, : Tetrahedron: Asymmetry10,1201-1206,1999;AD Brabban et al, : Journal of industrial Microbiology16,8-14,1996] !Tbogoot/等在超高温古菌SwZ/Wo/ws■中分离出了(+) Y-内酰胺酶,该酶的热稳定性较好,具有绝对选择性,只专一性水解(+) Y-内酰胺,而不会水解(_) Y-内酸胺[Toogood, et al, :Tetrahedron 60, 711 - 716, 2004] 国内相关研究较少,李海泉等以N-乙酰苯丙氨酸为唯一碳源,筛选出了一株产Y-内酰胺酶的微杆菌氧化经微杆菌(Microbacterium hydrocarbonoxydans)[李海泉等微生物学报,46 (4)571-575,2006];但该菌株能耐受的底物浓度较低(0.5 g/L — 20 g/L)[郑国钧等CN101113423A],尚未达到工业化生产的要求;后来他们对该菌种进行了诱变[郑国钧等CN101240257A],使酶活提高了 11倍。并对诱变菌株进行了细胞固定化研究,提高了细胞的稳定性,可重复使用[郑国钧等CN 101285059A],尽管酶活有了很大的提高,但是能耐受的底物浓度仍不高,不利于工业化生产的应用。
本发明的目的是提供一种微生物立体选择性水解外消旋体2-氮杂二环-[2. 2. I]-庚烷-5-烯-3-酮(以下简称(±) Y-内酰胺),制备㈠Y-内酰胺的方法。为了达到上述目的,本发明采用以下技术方案从土壤中筛选获得具有高对映选择性(+) Y-内酰胺酶酶活的菌株一戴尔福特菌sp. ) CGMCC No. 5755,利用该微生物菌株立体选择性水解外消旋底物(±) Y-内酰胺,制备(_) Y-内酰胺。步骤如下 (I)微生物菌株的筛选将从本地化工厂附近采集的20多份土样,用无菌水稀释静置后取上清接种于富集培养基,将富集培养后的菌液涂布于平板筛选培养基,20-30°C培养2 - 3天,挑取单菌落,进行活性测定。将筛选获得的单菌落接入发酵培养基中,在20 — 40°C、50 — 250 r/min下培养48h后,将离心获得的湿菌体悬浮于磷酸盐缓冲溶液(0. 01-0.5 mol/L, pH 4 - 10)中,添加终浓度为5 — 20 g/L的(±) Y-内酰胺底物,在20 - 40°C, 100 — 300 r/min下反应12- 48 h,取样进行HPLC分析。富集培养基(g/L):酵母提取物0.05 — 2,(±) Y-内酰胺0.2 — 10,NH4Cl0.2- 10,NaH2PO4 0. 01 — 0. 5,Na2HPO4 0. 01 — 0. 5,MgSO4 0. 01 — 0. 5,pH 4 — 10。 平板筛选培养基(g/L):酵母提取物0. 01 - 2,N-乙酰-L-苯丙氨酸0. 2 一 10,NH4Cl 0.2- 10,NaH2PO4 0. 01 — 0. 5, Na2HPO4 0. 01 — 0. 5,MgSO4 0. 01 — 0. 5,琼脂粉 10 —30,pH 4 — 10。发酵培养基(g/L):牛肉膏0. 3 — 20,蛋白胨 2 — 50,NaCl I — 25,pH 4 — 10。在以上培养基50 mL装于250 mL的三角瓶中,121 °C、0. 15 Mpa灭菌20 min。筛选得到一株具有较高⑴Y -内酰胺酶活性的微生物菌株JNU-GL,该菌株经鉴定为戴尔福特菌sp.,现保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏编号为CGMCC No. 5755。(2) 一种用所述菌株微生物立体选择性水解外消旋(±) Y-内酰胺,制备(-)Y-内酰胺的方法,采用具有立体选择性(+) Y-内酰胺酶酶活的微生物菌株,在水相体系中,以(±) Y-内酰胺为底物,进行不对称水解拆分制备(_) Y-内酰胺,步骤如下 微生物菌株戴尔福特菌sp. ) CGMCC No. 5755 ;
微生物菌株sp.的发酵培养条件优化的培养基组成为(g/L):蔗糖5 — 100,蛋白胨 5 — 50,牛肉膏 5 — 50,乙酰胺 5 — 150,MgSO4 0. 5 — 5,NaH2PO4 I — 10,Na2HPO4
I— 10, pH 4 — 10 ;培养温度20 — 40°C ;培养时间I 一 3天,将发酵液尚心获得湿菌体;反应体系的配制以(±) Y-内酰胺为底物,用pH 4-10,0.01-0.5 M磷酸盐缓冲液水相反应体系,底物浓度为2 g/L - 600 g/L ;
全细胞生物催化反应在上述的单一水相反应体系中,加入5 g/L — 100 g/L湿菌体,反应温度为25 - 45°C,反应时间为2 — 24 h,摇床转速为100 — 300 rpm ;
转化液的处理和分析微生物催化反应之后的转化液,离心除去菌体,上清液采用乙酸乙酯萃取,加适量无水硫酸镁干燥后,进行手性HPLC检测;
产物的分离提取采用乙酸乙酯萃取产物,无水硫酸镁干燥,在30 - 80°C下蒸发浓缩,-20 - 4°C下冷却结晶,得到高纯度的(_) Y-内酰胺,光学纯度95. 0% - 99. 9%,化学纯度为 95% — 99%o分析方法
(-)Y-内酰胺的对映体过量值(ee)采用手性高效液相色谱法。色谱柱型号为Daicel公司CHIRALPAK AS-H ;流动相为异丙醇/乙腈(v/v) =80/20 ;流速0. 5mL/min ;检测波长230nmo本发明的有益效果本发明利用筛选获得的具有高对映选择性的(+) Y-内酰胺酶产生菌株戴尔福特菌sp. CGMCC No. 5755,在水相体系中选择性水解外消旋Y-内酰胺得到(-)Y-内酰胺,在200 g/L底物浓度条件下,产物(-)Y-内酰胺的光学纯度(ee值)达到100%,产物经萃取、蒸发浓缩、冷却结晶得到光学纯的㈠Y-内酰胺,产物光学纯度为95. 0% - 99. 9%,化学纯度为95% — 99%。该微生物催化不对称水解制备(_) Y _内酰胺的方法具有高立体选择性、高反应产率、高产物浓度的特点。生物材料样品保藏一株产高对映选择性(+) Y-内酰胺酶酶活的菌株,其分类命名为戴尔福特菌sp. ) JNU-GL,已保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,简称CGMCCJia :北京市朝阳区北辰西路I号院3号中国科学院微生物研究所,保藏编号为CGMCC No. 5755,保藏日期2012年2月14日。

做一个详细的说明。实施例I :具有内酰胺酶活性的微生物菌株筛选
将从本地化工厂附近采集的20多份土样,用无菌水稀释静置后取上清接种于富集培养基,将富集培养后的菌液涂布于平板筛选培养基,30°C培养2 — 3天,挑取单菌落,进行活性测定。将筛选获得的单菌落接入发酵培养基中,30°C、110 r/min培养48 h。然后将离心获得的湿菌体悬浮于磷酸盐缓冲溶液(0.05 mol/L, pH 7.0)中,湿菌体浓度50 g/L,底物(±) Y-内酰胺浓度为10 g/L,在30°C、180 r/min下反应,在48 h内取样,转化液经离心除去菌体,取上清液采用乙酸乙酯萃取,加适量无水硫酸镁干燥后,进行手性HPLC检测。筛选获得一株微生物菌株JNU-GL,表现出较高的立体选择性和转化率,产物的光学纯度(ee值)大于99. 5%。该菌株经鉴定为戴尔福特菌sp.,现保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,编号为CGMCC No. 5755。富集培养基(g/L):酵母提取物0. 1,(±) Y-内酰胺 2,NH4Cl 2,NaH2PO4 0. 1,Na2HPO4 0. 1,MgSO4 0. 1,调节 pH 7. O。平板筛选培养基(g/L):酵母提取物0. 1,N_乙酰-L-苯丙氨酸2,NH4Cl 2,NaH2PO4
0.1,Na2HPO4 0. 1,MgSO4 0. 1,琼脂粉 20,调节 pH 7. O。实施例2 :不同碳源对发酵产酶的影响
以蛋白胨(10 %)、酵母膏(5 %)为氮源,按3%浓度分别添加下列碳源葡萄糖、a-乳糖、菊糖、蔗糖、可溶性淀粉、柠檬酸、柠檬酸三钠、甘油、玉米浆,作为发酵培养基,并用于外消旋Y-内酰胺的水解反应。微生物催化反应之后的转化液,离心分离菌体,取上清以乙酸乙酯萃取,加适量无水硫酸镁干燥后,进行手性HPLC检测。考察不同碳源对菌株sp. CGMCC 5755发酵产酶和产物光学纯度的影响。由表2可以看出碳源对菌体的生物量影响不大,对ee有较大影响。采用甘油、蔗糖、可溶性淀粉、a -乳糖的ee值可以达到99. 5%以上。表2碳源对发酵产酶的影响


本发明公开了一种微生物催化不对称水解制备(-)γ-内酰胺的方法,属于生物工程技术领域。外消旋体2-氮杂二环-[2.2.1]-庚烷-5-烯-3-酮(以下简称(±)γ-内酰胺)。本发明方法利用从土壤中筛选获得的具有高对映选择性的(+)γ-内酰胺酶的微生物菌株,鉴定为戴尔福特菌(Delftiasp.),保藏号为CGMCCNo.5755;在水相体系中立体选择性水解(±)γ-内酰胺,制备(-)γ-内酰胺。在200g/L底物浓度条件下,产物(-)γ-内酰胺经萃取、蒸发浓缩、冷却结晶得到产物(-)γ-内酰胺的光学纯度95.0%-99.9%,化学纯度为95%-99%。该微生物催化不对称水解(±)γ-内酰胺制备(-)γ-内酰胺的方法具有高立体选择性、高反应产率和高产物浓度的特点。



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