专利名称:起催化作用的抗因子Ⅷ同种抗体的制作方法图1带抑制剂的血友病A病人的亲和纯化抗因子VIII IgG抗体对[125I]-因子VIII的水解。图1(A)在SDS-PAGE和反射自显影之前,使[125I]标记的因子VIII与病人Bor(泳道Bor),Che(泳道Che)和Wal(泳道Wal)的亲和纯化抗因子VIII IgG,或者与缓冲剂单独(泳道1)在38℃下孵育10小时。在三位病人的两位(Bor和Wal)中,因子VIII与亲和纯化的抗因子VIII IgG的孵育导致因子VIII分子的水解。相反,当[125I]标记的因子VIII与从病人Che(泳道Che)的血浆中纯化的抗因子VIII IgG一起孵育时,因子VIII的迁移轮廓不变。当因子VIII与人类单克隆M061抗地高辛IgG(mAb)或与通常未分级的多克隆人类IgG(Sandoglobulin?,IVIg)一起孵育时,因子VIII的迁移轮廓也不变。图1(B)由ELISA所测定的亲和柱的流通物缺少抗因子VIII抗体,并且[125I]标记的因子VIII未水解。图1(C)从含有病人Wal和Bor的亲和纯化抗因子VIII抗体的酸洗脱液中,通过色谱法除去蛋白质G上的IgG导致它们对因子VIII的水解活性丧失。图2抗因子VIII抗体的催化活性的尺寸排阻色谱法。图2(A)为进一步排除抗体蛋白水解活性造成的蛋白酶污染的可能性,用8M尿素处理病人Wal的亲和纯化的抗因子VIII抗体,并对其进行尺寸排阻色谱法。在馏分(fraction)25中分离出相应于ELISA指示的IgG的一个主峰。水解活性随着IgG馏分一起共洗脱,而在IgG不存在的馏分(例如馏分35)中未检测到该活性。图2(B)馏分25中分离出相应于IgG的主峰,其由馏分的SDS-PAGE放射性标记含量指示。
图3[125I]-因子VIII蛋白质水解作用对于带抑制剂的血友病A病人的亲和纯化的抗因子VIII抗体的剂量和时间的依赖性。
研究因子VIII被病人Bor和Wal的抗因子VIII同种抗体水解的动力学。[125I]标记的因子VIII被病人Wal的抗因子VIII IgG水解的速率比被病人Bor的抗因子VIII IgG水解显示出的速率快,这表明病人的催化抗体显示出不同的动力学特性,或者病人之间抗因子VIII抗体中催化抗体的比例不同。
例4在增加量的冷却因子VIII存在下,抗因子VIII IgG抗体对[125I]-因子VIII的水解。
在固定浓度的[125I]-因子VIII存在下,通过将病人Wal的抗因子VIII IgG与增加浓度的未标记因子VIII一起孵育,研究抗体介导的因子VIII的水解动力学。加入增加量的未标记因子VIII导致抗因子VIII IgG对[125I]-因子VIII水解的剂量依赖的抑制。在使用最大浓度(即1.7μM)的因子VIII时,因子VIII水解未达到饱和。将速度倒数作为基质浓度倒数的函数画出的曲线是线性的(r=0.99),表明该反应符合简单的Michaelis-Menten动力学,如同已在多克隆催化自身抗体中观察到的。
图5病人Wal的抗因子VIII IgG的催化活性的抑制。
在Pefabloc?(由Roche Diagnostics GmbH,Mannheim,德国销售)存在下,当抗体和因子VIII共孵育时,病人Wal的放射性标记的抗因子VIII同种抗体对因子VIII的蛋白质水解抑制到约62%,表明了某些丝氨酸蛋白酶抑制剂中和一些催化抗体的催化活性的效力。
实施例例I抗因子VIII抗体的亲和纯化通过硫酸铵沉淀(法)从血浆中分离出抗体。抗体与因子VIII反应,然后在CNBr活化的Sepharose 4B matrix上亲和纯化,在该Sepharose 4Bmatrix上已经偶联了免疫纯化的从市售人类血浆得到的因子VIII(25000U/3g凝胶)。收集柱流通物。用pH为7.4的PBS进行大量冲洗,用pH为2.8的0.2M甘氨酸洗脱抗因子VIII抗体,对PBS进行渗析,并用Centriperep浓缩。将流通物和洗脱液等分并在-20℃下保存直至使用。抗因子VIII抗体的F(ab’)2片断用先前所述的方法制备。
在病人Bor,Che和Wal中,施加到柱子上的抗因子VIII IgG的浓度分别为每10mg IgG含130、20和280μg(即,143±130μg/mI的未分级的血浆),这与以前观察到的一致。例II因子VIII的中和活性用Kasper等人的方法测定抗因子VIII抗体的因子VIII中和活性,并用Bethesda单位(BU)(ref)表示。BU的定义是使得因子VIII促凝血活性被抑制50%的IgG浓度的倒数。残留的因子VIII活性用一步测定法测定,用缺乏因子VIII(Behring)的人类血浆作为基质,将人类胎盘pathromtin?(Behring)作为活化剂,测定被活化的部分促凝血酶原激酶的时间。被测试的加热了的血浆或免疫纯化的抗因子VIII IgG与贮存的含枸橼酸盐人类血浆在37℃下孵育2小时。将参比血浆池(免疫AG,Wien)的四种顺次的稀释物的凝结时间与要测试的各试样的三种稀释物的凝结时间对比。在Owren-Koller缓冲器中(Diagnostica Stago)进行稀释。中间测试变化范围在1和2.5%之间。
病人Bor,Che和Wal的亲和纯化的抗因子VIII抗体抑制因子VIII促凝血活性分别达到57.0,64.0和43.0 BU/mg IgG。例III因子VIII的水解测试用生碘方法用125I对市售人类重组体因子VIII标记,使其具有特定活性11.6nCi/μg。[125I]-因子VIII(1.5到150ng)单独或与17到1667nM的免疫纯化的抗因子VIII IgG在50μl的50mM的tris-HCI pH7.7、100mM的甘氨酸、0.025%的土温-20和0.02%NaN3中,在38℃下孵育5分钟到10小时。人类单克隆抗地高辛IgG M061(mAb)和通常未分级的人类多克隆IgG(IVIg,Sand-oglobulin?)用作阴性对照。将试样与不带有巯基乙醇的Laemmli’缓冲液以1∶1混合,在每个泳道中装载20μl各试样后,不煮沸对其进行SDS电泳。在各泳道装载了20μl各试样之后,在不减速的条件下,使试样在7.5%和15%SDS-PAGE平行跑(电泳)。用微型PROTEAN II体系以25m A/gel在室温下进行迁移,直至染料前部到达凝胶底部。然后将凝胶干燥,用X-OMAT AR显示蛋白质带。在放射自显影之后,因子VIII带的表观分子量200和300kDa与其被抗因子VIII IgG水解的一致,扫描因子VIII带,以计算被标记的因子VIII的水解速率。例IV快速蛋白质液相色谱凝胶过滤用8M尿素处理病人Wal(740μg)的一百μl等分的抗因子VIII IgG,以0.2ml/min的流动速率在用PBS-0.01%叠氮化物平衡了的superose-12柱子上进行凝胶过滤。收集500μl的馏分,用夹心ELISA测试IgG的存在,并在稀释10倍后测试因子VIII分解蛋白的活性。在馏分25中的蛋白质被125I放射标记,并在不减速的情况下与通常的多克隆人类IgG平行地进行SDS-PAGE。凝胶用Comassie Blue染色,并进行放射自显影;然后将两个影像重叠。在相应于ELISA指示的IgG以及馏分的放射性标记含量SDS-PAGE的馏分25中分离出一个主峰。与IgG馏分共洗脱出水解活性,而在不存在IgG的馏分(例如馏分35)中未检测到该活性。例VNH2端序列的分析未标记的人类重组体因子VIII蔗糖制剂(rDNA-BHK)(300μg,八齿芦苇草,Bayer Corporation,Berkeley,CA)在38℃下被在1500μl的50mM tris-HCI pH7.7、100mM的甘氨酸、0.025%吐温-20和0.02%NaN3中的病人Wal(74μg)的抗因子VIII IgG处理24小时。在不减速的条件下,以50mA在10%的SDS-PAGE上跑(电泳)所得的因子VIII片断,并在pH为11.0时,在10mM CAPS,10%乙醇中的Hybond-P PVDF薄膜(Amersham,Little Chalfont,England)上以100mA交换2小时。用考马斯蓝染色后,切断可见带,并用自动蛋白质微序列器Prosize 492 cLC(PE-AppliedBiosystems,Foster City,CA)进行N末端测序。被测序的蛋白质的量的范围是0.5到2pmol,这取决于片断。
主要的易断裂键如下Arg372-Ser373(R372-S373),位于因子VIII的A1和A2结构域之间;Tyr1680-Asp1681(Y1680-D1681),位于A3结构域的N-端上,Glu1794-Asp1795(E1794-D1795)位于A3结构域之内。抗因子VIII抗体对因子VIII多个部位的裂解可能是从带有多特征催化活性的单个抗体或多克隆抗体群产生的,均显示出独特的裂解部位特异性。
例VI用Pefabloc?,一种丝氨酸蛋白酶种属抑制剂进行抑制剂研究在Pefabloc?存在下,用带抑制剂的血友病A病人的亲和纯化的抗因子VIII IgG抗体进行[125I]-因子VIII的水解。在38℃下,[125I]-因子VIII(150ng)与病人Wal的50μg/ml的免疫纯化的抗因子VIII IgG单独共孵育,或在抗因子VIII IgG和4mM丝氨酸蛋白酶抑制剂Pefabloc?(Boehringer)同时存在下孵育5小时。然后在不减速的情况下,用7.5%SDS-PAGE分析因子VIII。在放射自显影之后,扫描与抗因子VIII IgG造成的水解一致的表观分子量为200和300kDa的因子VIII带,以计算被标记的因子VIII的水解%。
当在Pefabloc?存在下,抗体和因子VIII共孵育时,放射性标记的因子VIII被病人Wal的抗因子VIII同种抗体的蛋白质水解的抑制为约62%,表明某些丝氨酸蛋白酶抑制剂中和一些催化抗体的催化活性的效力。进一步观察使用125I放射性标记的因子VIII作为目标分子,对带有血友病A的十位高响应病人的纯化IgG进行筛选,在六位病人中观察到因子VIII迁移轮廓的变化。这些结果证实了申请人前面的观察,并表明在约60%的病人中发现起催化作用的抗因子VIII抗体。
本发明涉及一种测定能降解哺乳动物中因子VIII的起催化作用的抗因子VIII同种抗体的存在的方法,以及由所述催化作用的抗因子VIII同种抗体使所述因子VIII分子中裂解位点特征化的方法。本发明还涉及一种抗因子VIII同种抗体催化的因子VIII降解抑制剂;以及包含所述能降解哺乳动物中因子VIII并从所述测定方法中获得的起催化作用的抗因子VIII同种抗体的药物组合物;本发明还涉及一种包含抗因子VIII同种抗体催化的因子VIII降解抑制剂的药物组合物。最后本发明涉及所述抗因子VIII同种抗体催化的因子VIII降解抑制剂,包含所述能降解因子VIII以及起源于所述测定方法的起催化作用的抗因子VIII同种抗体的药物组合物,以及包含所述抗因子VIII同种抗体催化的因子VIII降解抑制剂的药物组合物在治疗中的应用。
起催化作用的抗因子Ⅷ同种抗体制作方法
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