专利名称：谷氏菌素生物合成相关蛋白系统及其编码基因簇与应用的制作方法微生物可产生种类繁多的次级代谢产物，其中最重要的是抗生素。在目前所知的15000多种微生物来源的天然抗生素中，约60%是由链霉菌产生的，这个数据无疑凸现了链霉菌在抗生素产业中所处的主导地位。已知的抗生素从结构上可大致分为:大环内酯类、四环素类、多肽类、糖肽类、β_内酰氨类、核苷类、氨基糖苷类等。核苷肽类抗生素是属于核苷类抗生素的一个类群，包括一类结构多样、活性各异的抗生素，从结构上来看，它们具有一个共同的特征，即都包括三个不同的结构元件:杂环碱基、氨基糖、稀有氨基酸或肽基部分；杂环碱基与氨基糖以N-C糖苷键相连，肽基部分与氨基糖之间以肽键相连。这类抗生素包括:谷氏菌素(gougerotin),宁南霉素(ningnanmycin),尼可霉素(nikkomycin),多氧霉素(polyoxin),杀稻痕菌素(blasticidin),灭粉霉素(mildiomycin),嘌呤霉素(puromycin)等。谷氏菌素(又称星霉素asteromycin、云谷霉素yungumycin)是一种胞喃唳核苷肽类抗生素，1962年由日本科学家从谷氏链霉菌中分离得到，1968年确定了其化学结构，由胞嘧啶、氨基己糖和肌氨酰丝氨酸二肽三个部分组成。研究发现谷氏菌素具有抗革兰氏阳性和阴性细菌的活性，还具有抗支原体和抗病毒作用。关于作用机制的研究表明，谷氏菌素是蛋白合成的特异抑制子，对于非细胞系统的蛋白质合成有很强的抑制作用，其作用方式与嘌呤霉素类似，特异性抑制氨基酸的参入，而对完整蛋白链从核糖体的释放没有影响，其作用靶位是核糖体的肽基转移酶。我国科学家陆续从谷氏链霉菌、禾粟链霉菌和小白链霉菌中分离得到谷氏菌素，研究发现谷 氏菌素还具有与5-氟尿嘧啶相当的抗肿瘤活性，其水解产物云南霉素具有较弱的抗细菌活性和更强的抗肿瘤活性，与5-氟尿嘧啶相比，其体内的抑瘤作用相近，细胞毒性较弱，表明其作为新抗肿瘤抗生素，有可能应用于肿瘤治疗。谷氏菌素的对映异构体宁南霉素，对水稻白叶枯病，白粉病，水稻稻瘟病等植物病原真菌和烟草花叶病毒的防治具有良好效果，表明谷氏菌素具有作为农用抗生素开发应用的前景。此外谷氏菌素还具有驱虫和杀螨等活性。对于抗生素的途径改造优化、产量提高及组合生物合成等研究，都是以抗生素在微生物体内本来的生物合成为前提的，所以研究抗生素的生物合成，阐明其生物合成途径是一切工作的重要基础。但是目前关于谷氏菌素等类似化合物的研究一直集中在生物活性上，有关生物合成及其途径的工作至今未见报道。核苷肽类抗生素中，还有杀稻瘟菌素、嘌呤霉素和链丝菌素的生物合成基因簇已经报道。其中杀稻瘟菌素与谷氏菌素具有类似的核苷部分，2003年，美国科学家报道了其生物合成基因簇，其中结构基因、调控基因和抗性基因在基因组上连锁存在。对于负责核苷部分合成的关键基因blsD，已经通过体外的生化研究证明了其功能，BlsD负责将胞嘧啶和m)P-葡萄糖醛酸进行缩合。
本发明的一个目的是提供一种与谷氏菌素合成相关蛋白组。本发明提供的蛋白组，由蛋白1-蛋白25组成；所述蛋白I为序列表中序列2所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列2所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列2衍生的蛋白质；所述蛋白2为序列表中序列3所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列3所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列3衍生的蛋白质；所述蛋白3为序列表中序列4所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列4所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列4衍生的蛋白质；所述蛋白4为序列表中序列5所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列5所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列5衍生的蛋白质；所述蛋白5为序列表中序列6所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列6所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列6衍生的蛋白质；所述蛋白6为序列表中序列7所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列7所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列7衍生的蛋白质；所述蛋白7为序列表中序列8所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列8所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列8衍生的蛋白质；所述蛋白8为序列表中序列9所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列9所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列9衍生的蛋白质；所述蛋白9为序列表中序列10所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列10所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列10衍生的蛋白质；所述蛋白10为序列表中序列11所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列11所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列11衍生的蛋白质；所述蛋白11为序列表中序列12所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列12所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列12衍生的蛋白质；所述蛋白12为序列表中序列13所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列13所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列13衍生的蛋白质；所述蛋白13为序列表中序列14所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列14所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列14衍生的蛋白质；所述蛋白14为序列表中序列15所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列15所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列15衍生的蛋白质；所述蛋白15为序列表中序列16所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列16所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列16衍生的蛋白质；所述蛋白16为序列表中序列17所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列17所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列17衍生的蛋白质；所述蛋白17为序列表中序列18所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列18所示的氨基酸序列 经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列18衍生的蛋白质；所述蛋白18为序列表中序列19所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列19所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列19衍生的蛋白质；所述蛋白19为序列表中序列20所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列20所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列20衍生的蛋白质；所述蛋白20为序列表中序列21所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列21所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列21衍生的蛋白质；所述蛋白21为序列表中序列22所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列22所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列22衍生的蛋白质；所述蛋白22为序列表中序列23所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列23所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列23衍生的蛋白质；所述蛋白23为序列表中序列24所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列24所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列24衍生的蛋白质；所述蛋白24为序列表中序列25所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列25所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列25衍生的蛋白质；所述蛋白25为序列表中序列26所示的氨基酸序列组成的蛋白质或将序列表中序列26所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与谷氏菌素合成相关的由序列26衍生的蛋白质。上述蛋白中，一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加是指不多于十个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加。编码上述蛋白组的基因簇也是本发明保护的范围。上述基因簇是如下I)或2)或3)的DNA分子:I)序列表中序列I所示的DNA分子；2)在严格条件下与I)限定的DNA序列杂交且编码与谷氏菌素合成相关蛋白的DNA分子；3)与I)限定的DNA序列至少具有70%、至少具有75%、至少具有80%、至少具有85%、至少具有90%、至少具有95%、至少具有96%、至少具有97%、至少具有98%或至少具有99%同源性且编码与谷氏菌素合成相关蛋白的DNA分子。上述严格条件为在6XSSC，0.5% SDS的溶液中，在65°C下杂交，然后用2XSSC，0.1 % SDS 和 I X SSC, 0.1 % SDS 各洗膜一次。含有上述基因簇的重组载体、表达盒、转基因细胞系或重组菌也是本发明保护的范围。 上述重组载体为将上述基因簇插入PSET152载体中，得到表达上述蛋白组的重组载体。上述重组菌为将上述的重组载体导入宿主菌中，得到的重组菌；所述宿主菌具体为天蓝色链霉菌Ml 146。扩增上述基因簇全长或其任意片段的引物对也是本发明保护的范围。上述的蛋白组、上述基因簇、上述的重组载体、表达盒、转基因细胞系或重组菌在合成谷氏菌素中的应用也是本发明保护的范围。本发明的另一个目的是提供一种合成谷氏菌素的方法。本发明提供的方法，为发酵上述的重组菌，收集发酵产物，即得到谷氏菌素。本发明的实验证明，本发明提供了与谷氏菌素生物合成相关的所有基因和蛋白信息，有助于阐明与理解谷氏菌素及相关核苷肽类抗生素家族生物合成的分子机理，从而为进一步利用基因工程手段改造提供理论基础与材料。本发明所提供的基因及其所编码的蛋白质，从分子水平上阐明谷氏菌素的生物合成机理，进而可以实现谷氏菌素等核苷肽类抗生素的途径改造优化、产量提高和利用合成生物学手段获得生物活性更高的衍生物，也可以用来查找和发展可用于医药，工业，农业的化合物或蛋白。图1为谷氏菌素和杀稻瘟菌素的化学结构图2为推断的谷氏菌素的生物合成途径图3为谷氏菌素的1H-NMR图4为谷氏菌素的13C-NMR图5为gouH基因破坏后的突变株的发酵产物图6为谷氏菌素在天蓝色链霉菌Ml 146中的异源表达
提取谷氏菌素产生菌禾粟链霉菌AS4.506 (购自中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心)的基因组DNA，具体如下:将谷氏菌素产生菌禾粟链霉菌AS4.506接种于MS (甘露醇2 %，豆粉2 %，琼脂1.8% )上产孢，接种孢子至5ml YEME(酵母提取物0.3%，胰蛋白胨0.5%，麦芽提取物0.3%，蔗糖20%，每IOOml使用前加入以下灭过菌的溶液，2.5M MgCl2 200 μ 1，50%葡萄糖2ml，10%甘氨酸5ml)中28度培养2_3天，离心收集菌体，500 μ I溶菌酶缓冲液(蔗糖15%；Tris-HCl,pH8.0,25mM ；EDTA 25mM,pH = 8.0)洗涤，离心，去上清；重复上述步骤。将菌体用500μ I溶菌酶溶液(5mg/ml)悬浮，37°C水浴30_60min。至菌液呈均一状态后，加入250 μ I 3% SDS,小心混匀呈澄清。加入150 μ I的中性酚/氯仿，小心混匀约IOmin,离心，取上清，加1/10体积的3Μ NaAc (pH 4.8),2.5倍体积的无水乙醇，摇匀，吸出沉淀块；70%乙醇洗涤一遍，待乙醇挥发之后用500 μ I TE (Tris-HCl 10mM,EDTA ImM，pH = 8.0)溶解沉淀，加RNase A至终浓度50 μ g/ml，37。。作用30min。加150 μ I中性酚/氯仿，小心混匀，离心，取上清；如中间层多可重复此步骤至无中间蛋白层，加150μ I氯仿，混匀，离心，取上清；加1/10体积的3Μ NaAc (pH 4.8)，加2倍体积的无水乙醇，混匀，吸出沉淀块；加适量70%乙醇，将沉淀移至另一管。将离心管室温开盖放置至可见的痕量乙醇挥发，但不要使DNA沉淀完全干燥，否则极难溶解，也可将管放入约60°C的水浴中作用15min使乙醇挥发，加入适量TE溶解沉淀(可放入37°C水浴中加快溶解)，得到基因组DNA。2、谷氏菌素产生菌禾粟链霉菌AS4.506基因组文库的构建与谷氏菌素生物合成基因族的筛选:使用EPICENTRE biotechnologies 公司的 Cat.N0.CCFOSl10 CopyControI Fosmid Library Production Kit with pCClFOS Vector 构建禾粟链霉菌的基因组文库。将禾粟链霉菌的基因组DNA机械剪切成约40kb大小，末端补平并磷酸化。用低熔点胶分离补平的DNA并回收纯化30-40kb大小的DNA，将处理好的基因组DNA与试剂盒所带的pCClFOS Vector连接，包装，转染E.coli EPI300_T1K细胞(试剂盒所带的)，涂布于LB (氯霉素)平板，37度培养过夜。利用PCR(聚合酶链式反应)来筛选基因组文库，首先将每块平板上的菌落先转移至另外一块新的LB平板，将两块平板在37度继续培养10小时。将原来的平板上的菌落合并，煮沸裂解作为模板然后进行PCR反应，先将阳性信号定位于每块平板。再将有阳性信号平板上的菌落(用新转移的平板)转移至96孔板上培养，将每排和每列上的克隆混合，煮沸裂解作为模板进行PCR反应，将阳性信号定位于点，得到有阳性信号的克隆，即为含有谷氏菌素生物合成基因簇的fosmid质粒。通过对fosmid的端基测序和生物信息学分析,认为D6-4H能够包含谷氏菌素完整的生物合成基因簇。D6-4H为将序列I插入pCClFOS Vector中得到的重组质粒。3、推测的谷氏菌素生物合成途径如图2所示，gouG编码磷酸甘油醛变位酶，将3-磷酸甘油醛转化为2_磷酸甘油醛，然后可能在goul和gouL的催化下生成丝氨酸，为谷氏菌素的合成提供底物。胞嘧啶和UDP-葡萄糖醛酸在GouF催化下生成胞嘧啶基葡萄糖醛酸，氧化还原酶GouA对葡萄糖醛酸的4-羟基进行氧化，再由氨基转移酶Gou H将其氨基化。天门冬酰胺合成酶GouB将葡萄糖醛酸的6-羧基转化为酰胺。糖基转移酶GouD，含辅酶A结合结构域的蛋白GouK和辅酶A氮-酰基转移酶GouJ可能负责了糖基与丝氨酸和甘氨酸之间肽键的生成。最后甲基转移酶GouN对甘氨酸的氨基进行甲基化，得到谷氏菌素。二、禾粟链霉菌AS4.506发酵产物的鉴定 将禾粟链霉菌AS4.506接种于MS (甘露醇2 %，豆粉2 %，琼脂1.8%)上产孢，接种一环孢子至IOml YEME (酵母提取物0.3%，胰蛋白胨0.5 %，麦芽提取物0.3 %，蔗糖20 %，每IOOml使用前加入以下灭菌的溶液，2.5M MgCl2 200 μ 1，50%葡萄糖2ml)中28度培养2天至对数生长期后期。然后按照10%的比例接种于发酵培养基中(葡萄糖2%，可溶性淀粉1%，酵母粉0.5%，蛋白胨0.5%, NaCl 0.3%，黄豆粉I %，50ml/500ml三角瓶)28度220rpm培养96hr，收集发酵液。首先6000rpm 5min离心发酵液,收集上清液；用草酸调产物的pH值至3.0,煮沸IOmin, 6000rpm 5min离心去除沉淀，收集上清液I ;将上清液I过强酸性阳离子交换树脂Dowex 50WX2 (H+, 100-200mesh, Sigma), 0.3M 氨水洗脱(洗脱速度为 lml/min,收集磷鹤酸阳性反应馏分(磷钨酸在碱性条件下不稳定，易被还原成蓝色，将磷钨酸用水溶解制成2%的水溶液，I: I混合出现蓝色沉淀)。旋转蒸发浓缩((400C )至小体积，乙酸调pH值至
4.5，加入8倍体积的预冷的95%乙醇，4°C过夜。13000rpm离心20min，收集沉淀并将其晾干，乙醇洗涤，用水重新溶解沉淀。2.2 μ m微孔滤膜过滤，收集滤液，通过HPLC进行进一步的纯化，HPLC分离的条件:试剂A =H2O (1%。三氯乙酸)；试剂B:甲醇。洗脱条件:流速Iml/min，92%水(1%。三氯乙酸)和8%甲醇恒定梯度。仪器:Agilent 1100HPLC ;半制备柱:Agilent公司的ZORBAX SB-C18 (9.2 X 250mm, 5 μ m)，并使用Agilent公司的相应的预柱，紫外检测波长为276nm。收集保留时间约为6.5min的峰对应的产物，浓缩即为纯化的产物。将上述 纯化的产物进行MS分析，[M+H]+ = 444.2，核磁分析结果如图3和图4所示，可以看出该纯化的产物即为谷氏菌素。可以说明在上述HPLC条件下，禾粟链霉菌AS4.506发酵产物中保留时间约为6.5min的峰对应的产物为谷氏菌素。三、gouH基因破坏突变体的获得及发酵产物的鉴定为了验证所克隆到的生物合成基因簇(序列I)与谷氏菌素的生物合成相关，对其中的一个编码氨基转移酶的基因gouH进行了体内的破坏实验。GouH推测负责对胞嘧啶基葡萄糖醛酸的C-4位进行氨基化，是谷氏菌素生物合成中的关键基因。UgouH基因破坏突变体的构建将载体pKC1139(Liao Guojian, Li Jine, Li Lei, Yang Haihua, TianYuqing, and Tan Huarong.2009.Selectively improving nikkomycin Z productionby blocking the imidazolone biosynthetic pathway of nikkomycin X anduracil feeding in Streptomyces ansochromogenes.Microb Cell Fact.8:61, doi:10.1186/1475-2859-8-61，公众可从中国科学院微生物研究所获得。)以SacI酶切，回收大小为5822bp的DNA片段，与相同酶切的包含红霉素与卡那霉素抗性基因的2685bpDNA片段(序列27)连接，获得质粒pKC1139EK。将EcoRV酶切线性化的pKC1139EK质粒DNA片段电击转化导入大肠杆菌BW25113/pKD20/D6-4H(将D6-4H转化BW25113/pKD20获得，BW25113/pKD20 记载在 Datsenko, K.A.& Wanner, B.L.2000.0ne-step inactivationof chromosomal genes in Escherichia coli K—12 using PCR products.Proc.Natl.Acad.Sc1.USA 97，6640-6645中，公众可从中国科学院微生物研究所获得。)中，利用PKC1139与D6-4H在多克隆位点两侧的IacZa同源序列，同源重组后获得含有重组质粒PKC1139EK::D6-4H 的大肠杆菌 BW25113/pKD20/pKC1139EK::D6_4H。用Sphl/Hindlll 双酶切 pSET152 (Li Jine, Li Lei, Tian Yuqing, Niu Guoqing,and Tan Huarong*.(201I)Hybrid antibiotics with the nikkomycin nucleoside andpolyoxin peptidyl moieties.Metab Eng.13:336-344,公众可从中国科学院微生物研究所获得。)，回收3162bpDNA片段，Klenow大片段聚合酶平端化后自连，获得重组质粒PSET152SV。以禾粟链霉菌AS4.506 基因组 DNA 为模板，用 gouHUpF(5’-AAT TCT AGA ACC GGCCGA CCGAAC CCC-3)/gouHUpR (5，-MT AGA TCT CAT GAG GGT CGT CCA ATC TTG ACG AG-3)和 gouHDnF(5’-AAT AGA TCT TAA CCA CCC CGA TGA ACC GCA TC-3)/gouHDnR (5 ’ -AATGAA TTC GCTCGG GAC ACC TCG ACG A-3)引物分别 PCR 扩增得到分别为约 2kb 的 gouHUp和gouHDn片段。用Xbal/Bglll和Bglll/EcoRI分别酶切gouHUp和gouHDn，得到酶切后gouHUp和酶切后gouHDn ;将酶切后gouHUp和酶切后gouHDn分别与经过Xbal/EcoRI酶切的 pSET152SV 得到的 3128bpDNA 片段连接，得到 pSET152SV:: gouHDM。将BglII酶切的含有安普霉素和硫链丝菌素抗性基因的2378bp的DNA片段(序列28)，连入相同酶切的pSET152SV:: gouHDM，获得重组质粒pSET152SV:: gouHTA。以pSET 152SV:: gouHTA 为模板，用引物 gouHUpF/gouHDnR 通过 PCR 扩增得到6419bp的DNA片段，通过电击转化将该片段导入大肠杆菌BW25113/pKD20/PKC1139EK::D6-4H中，利用gouH上下游约2kb的同源序列，通过同源重组获得重组质粒PKC1139EK::D6-4H::gouHTA(见图 5A)。将重组质粒pKC1139EK::D64H:: gouHTA 转化 E.coli ET12567/pUZ8002 (Li Jine,Li Lei,Tian Yuqing,Niu Guoqing,and Tan Huarong*.(2011)Hybrid antibiotics withthe nikkomycin nucleoside and polyoxin peptidyl moieties.Metab Eng.13:336-344,公众可从中国科学院微生物研究所获得。)，菌液涂布在含有安普霉素、卡那霉素和氯霉素(终浓度分别为100 μ g/ml, 1 00 μ g/ml与25 μ g/ml)的LB固体培养基上。挑取单克隆于3ml含有抗生素的LB液体培养基中，37°C，220rpm培养过夜，次日按1: 100比例转接至IOml含有抗生素的LB中，37°C，220rpm培养至OD600值在0.4-0.6之间。4000rpm, 5min收集菌体，弃去上清，用等体积液体LB洗涤2次后，用0.5ml LB悬浮菌体备用。以2XYT液体培养基收集禾粟链霉菌AS4.506孢子，并用孢子收集器过滤除去菌丝体，剩余孢子悬浮于0.5ml 2XYT液体培养基中，50°C水浴lOmin，取出冷却至室温。混合大肠杆菌细胞和链霉菌孢子，涂布于含有MgCl2 (终浓度IOmM)的MS固体培养基，28°C培养16h后，用含有萘啶酮酸以及硫链丝菌素的无菌水涂布MS固体培养基(萘啶酮酸终浓度为25 μ g/ml，硫链丝菌素25 μ g/ml)，28°C继续培养5天。转化子转接至含有萘啶酮酸(终浓度25 μ g/ml)的MS固体培养基，长出的转化子再转接至含有硫链丝菌素(终浓度25 μ g/ml)的MS固体培养基。选择在含硫链丝菌素的MS固体培养基长出的若干个菌落抽提基因组DNA，PCR证实已转入质粒PKC1139EK::D64H::gouHIA后，扩大培养，以10%甘油收集孢子。将收集到的孢子悬液以无菌水稀释104、IO5UO6倍，各取150 μ I稀释后的孢子悬液均匀涂布于含有硫链丝菌素(终浓度25 μ g/ml)的MS固体培养基，38°C培养3至5天。温敏促使游离的质粒丢失。挑取单菌落分别接种于含有红霉素(终浓度20 μ g/ml)的MS固体培养基以及含有硫链丝菌素(终浓度25 μ g/ml)的MS固体培养基，28°C培养5天。选取在含有红霉素固体培养基上不生长而在含有硫链丝菌素的固体培养基上生长的单菌落。提取单菌落的基因组DNA,以gouHinF/gouHinR和tsrF/tsrR两对引物(gouHinF:5’ -GCGCGGGGCGACACGTCGGA-3 ；gouHinR:5’ -GCGCCGTGCCGAAGGAACAG-3。tsrF:5’ -AATTGCATGC GTGATTGCCGGTCAGGGCAG-3 ;tsrR:5’_AATT AAG CTTAGGTCCGGTGAGCCCACAAC-3)进行PCR验证，分别扩增得到1794bp和2528bp的DNA片段，符合的即为gouH基因破坏突变体。2、gouH基因破坏突变体发酵产物的鉴定接种gouH基因破坏突变体至IOml YEME (酵母提取物0.3%，胰蛋白胨0.5%，麦芽提取物0.3%，蔗糖20%，每IOOml使用前加入以下灭过菌的溶液，2.5M MgCl2 200 μ I,50%葡萄糖2ml)中28度培养2天至对数生长期后期。然后按照10%的比例接种于发酵培养基中(葡萄糖2%，可溶性淀粉1%，酵母粉0.5%，蛋白胨0.5%，NaCl 0.3%，黄豆粉
I%，50ml/500ml三角瓶)28度220rpm培养120hr，得到发酵产物，离心收集gouH基因破坏突变体上清液。以禾粟链霉菌AS4.506为对照。结果如图5B所示，可以看出，从上述二的实验看出禾粟链霉菌AS4.506发酵产物中保留时间约为6.5min的峰对应的即为谷氏菌素，因此看出，在同样的发酵和HPLC检测条件下，gouH基因破坏突变体·没有该峰，说明gouH基因破坏突变体不产生谷氏菌素。进一步说明基因簇与谷氏菌素合成相关，如果破坏了基因簇中的gouH基因，则不能合成谷氏菌素。实施例2、谷氏菌素基因族的应用为了证明已经克隆到完整的谷氏菌素生物合成基因簇，在天蓝色链霉菌中进行了异源表达实验，进行如下实验:1、重组菌株 S.coelicolor M1146_pGou 的获得I)重组质粒pGou的获得制备序列表中的序列I,将序列表中的序列I通过同源重组插入PSET152中得到的载体命名为重组质粒pGou。具体如下:(I)将fosmid质粒D6-4H通过电击转化导入菌株E.coli Bff 25113/pKD20(Datsenko, K.A.& Wanner, B.L.2000.0ne-step inactivation of chromosomalgenes in Escherichia coli K_12using PCR products.Proc.Natl.Acad.Sc1.USA 97,6640-6645.，公众可从中国科学院微生物研究所获得。)中，得到重组菌E.coli Bff 25113/PKD20/D6-4H。(2)将载体PSET152以EcoRV酶切，形成的线性DNA片段电击转化进入上述重组菌E.coli Bff 25113/pKD20/D6-4H中，同源重组，通过安普霉素筛选，得到转化子。提取转化子的质粒，用HindIII酶切，得到28466bp、4006bp、1081bp、969bp的片段，用EcoRI酶切，得到18067bp、8059bp、5788bp、2608bp的片段，符合的为阳性质粒，将该质粒命名为pGou，该质粒为将序列表中的序列I插入pSET152中得到的重组载体(图6A)。2)重组菌株 S.coelicolor M1146_pGou 的获得将上述I)得到的pGou转化E.coli ET12567 (pUZ8002)感受态细胞，通过大肠杆菌和链霉菌间的接合转移，将pGou导入天蓝色链霉菌M1146 (Streptomyces coelicolor,记载在 Katrin Flinspach, Lucia ffestrich, Leonard Kaysser, Stefanie Siebenberg, JuanPablo Gomez-Escribano, Mervyn Bibb, Bertolt Gust, Lutz Heide,2010, Heterologousexpression of the biosynthetic gene clusters of coumermycin A(I), clorobiocinand caprazamycins in genetically modified Streptomyces coelicolor strains.Biopolymers.93(9):823_832，公众可从中国科学院微生物研究所获得。)中。利用安普霉素筛选转化子，转化子在MS培养基(甘露醇2%，豆粉2%，琼脂1.8%)上产孢，收集孢子，得到重组菌。将重组菌提取基因组DNA,以gouRupF/gouRupR和gouHupF/gouHupR两对引物(gouRupF:5’-CCG GGA TCC GAC GAC TCG CTG GTG CTG C-3 ；gouRupR:5’_AAT GAA TTC CACGGT ACACCC GTT GTG-30GouHupF:5’_CCG GGA TCC GCG GAC CGG GCC GCC CTC-3 ；gouHupR:5，-AATGAA TTC CAT GAG GGT CGT CCA ATC TTG AC-3。)进行 PCR 验证，分别扩增得到得到约Ikb的片段，符合的为阳性重组菌，将该重组菌命名为S.coelicolor M1146_pGou，其为异源表达重组菌株天蓝色链霉菌。2、重组菌株 S.coelicolor M1146_pGou 的发酵接种一环重组菌株S.coelicolor M1146_pGou抱子至IOml YEME(酵母提取物0.3%,胰蛋白胨0.5%，麦芽提取物0.3 %，蔗糖20 %，每IOOml使用前加入以下灭过菌的溶液，2.5MMgCl2 200 μ 1，50%葡萄糖2ml)中28度培养2天至对数生长期后期。然后按照10%的比例接种于发酵培养基中( 葡萄糖2 %，可溶性淀粉I %，酵母粉0.5 %，蛋白胨0.5 %，NaCl 0.3%,黄豆粉 I %，50ml/500ml 三角瓶)28 度 220rpm 培养 120hr，收集 Ml 146-pGou 发酵液。采用同样的方法将禾粟链霉菌AS4.506和M1146进行发酵，收集发酵液分别作为AS4.506发酵液和Ml 146发酵液；采用同样的方法将空载体pSET152转入M1146中，得到M1146_pSET152，采用同样的方法发酵，收集发酵液为M1146-pSET152发酵液。3、发酵产物的鉴定先6000rpm 5min离心上述M1146_pGou发酵液，收集上清液经HPLC分析,HPLC分析的条件:试剂A:H20(1%。三氯乙酸)；试剂B:甲醇。洗脱条件:流速lml/min，92%水(1%0三氯乙酸)和8%甲醇恒定梯度。仪器:Agilent 1100HPLC ;分析柱:Agi lent公司的ZORBAXSB-C18(4.6X250mm，5ym)，并使用Agilent公司的相应的预柱。紫外检测波长为276nm。以上述的AS4.506发酵液、Ml 146发酵液和M1146_pSET152发酵液为对照。结果如6B所示，可以看出，由实施例1看出禾粟链霉菌AS4.506发酵产物中保留时间约为6.5min的峰对应的即为谷氏菌素，因此，仅有AS4.506发酵液和Ml 146-pGou发酵液存在保留时间约为6.5min的峰，即为谷氏菌素。进一步将禾粟链霉菌AS4.506发酵液和Ml 146-pGou发酵液中保留时间约为
6.5min的峰收集，进行MS-MS分析(液相色谱/三重四极杆串联质谱联用仪，Agilent1260/6460)，结果如图6C所示，进一步证明，得到谷氏菌素，从而证明基因簇可以异源表达谷氏菌素。


本发明公开了一种谷氏菌素生物合成相关蛋白系统及其编码基因簇与应用。本发明提供的蛋白组，由蛋白1-蛋白25组成；本发明还提供了基因簇，其核苷酸序列可为序列表中序列1所示的DNA分子，本发明的实验证明，本发明提供了与谷氏菌素生物合成相关的所有基因和蛋白信息，有助于阐明与理解谷氏菌素及相关核苷肽类抗生素家族生物合成的分子机理，从而为进一步利用基因工程手段改造提供理论基础与材料。本发明所提供的基因及其所编码的蛋白质，从分子水平上阐明谷氏菌素的生物合成机理，进而可以实现谷氏菌素等核苷肽类抗生素的途径改造优化、产量提高和利用合成生物学手段获得生物活性更高的衍生物。