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一族新的灵长类造血生长因子制作方法

  • 专利名称
    一族新的灵长类造血生长因子制作方法
  • 发明者
    斯蒂芬·C·克拉克, 阿格尼斯·B·希亚利塔, 尤·昌格·羊格
  • 公开日
    1988年7月20日
  • 申请日期
  • 优先权日
  • 申请人
    遗传学研究所公司导出引文BiBTeX, EndNote, RefMan
  • 文档编号
  • 关键字
  • 权利要求
  • 技术领域
    中已知的作为宿主细胞的各种E.coli变异菌株(例如,HB101,MC1061和以下各实施例中所用的各菌株)本方法中还可以使用枯草杆菌(B.subtilis),假单胞菌(Pseudomonas)和其它杆菌(Bacilli)的各种菌株本专业领域中普通技术人员所熟知的许多酵母菌也可用作表达本发明多肽的宿主细胞此外,当需要时,昆虫细胞也可用于本发明的方法作为宿主细胞例如,见Miller et al.,Genetic Engineering,8277-298(Plenum Press 1986)和其中所引述的各参考文献本发明的另一方面提供了在本发明方法中由于表达这些新灵长类多肽的载体这些载体包含有上述编码本发明新的灵长类多肽的新的DNA序列另外,参入有上述修饰过的序列的载体也是本发明的具体实施,而且在生产这些IL-3样多肽中是有用的在本方法中使用的载体还含有与本发明DNA编码序列联合作用的并能指导在所选宿主细胞中进行复制和表达的被选择过的调节序列本文所述的新族灵长类IL-3样生长因子中各成员可以用于治疗许多疾病,特别是治疗那些特征为造血系统中髓样细胞、红细胞样细胞、淋巴样细胞,巨核细胞或它们的相结合的水平降低的疾病此外,它们还可用于激活成熟的髓样细胞的(或)淋巴样细胞本发明多肽可治疗的还有白细胞减少症,一种外周血中循环白细胞减少症状白细胞减少症可由接触某些病毒和暴露于辐射而引发但经常是多种抗癌药剂的副作用,如化疗药物用这些IL-3样多肽组合物治疗白细胞减少症可以避免用现有药品所带来的不良副作用使用本发明的多肽治疗多种免疫缺陷症,如缺乏T和(或)B淋巴细胞,以及免疫紊乱如风湿性关节炎等均是有益的这些因子本身或与其它治疗物结合起来可以用于治疗或纠正由病毒如HTLⅥ,HTLⅦ,HⅣ侵染,强剂量辐射,抗癌药物以及其它医疗造成的免疫缺陷症本发明的多肽单独地或与其它促红细胞生成素相结合可用于治疗其它血细胞缺乏症,包括血小板减少症,贫血症这些新肽的其它用途在于治疗接受骨髓移植的患者,以及用标准方法生产用于诊断或治疗的单克隆或多隆抗体因而,本发明的另一方面是治疗上述各种症状的方法和药用组合物这种组合物包括有效治疗剂量的本发明灵长类IL-3样多肽族的一种或多种,并配合以药理上可接受的载体这种组合物可以经肠胃外地系统给药另外,还可以静脉内给药如果需要,还可以皮下给药当系统性地给药时,则本发明的组合物是以不含热原的非肠胃道给药可接受的水溶液形式使用的这种非肠胃道给药可接受的蛋白溶液,在考虑到pH值,等渗性和稳定性等而进行制备时,均是属于本专业领域的范围在治疗上述症状的方法中,使用的剂量应依医生考虑到各种影响药效的因素如患者的状况,体重,性别,饮食,患病程度,给药时间以及其它医疗因素而予以决定一般而言,每日剂量为每公斤体重200-1000mg多肽或50-5000单位多肽(一单位指在标准人骨髓检测中导致半最大刺激的多肽浓度)本发明的治疗方法和组合物还包括与其它的因子一起给药与本发明多肽同时或系列性共同给药的其它适宜的促红细胞生成素、CSFs和白细胞介素的非限定性名单包括GM-CSF,CSF-1,G-CSF,Meg-CSF,促红细胞生成素(EPO),IL-1,IL-4,IL-2,B细胞生长因子,B细胞分化因子和嗜曙红细胞分化因子其中最重要的是IL-3与IL-6(专业领域中也称作B细胞促进因子2)的结合,它在人胚细胞检测中显示出造成早期干细胞集落增殖的能力此外,在治疗当中,IL-3样多肽可与单克隆或多克隆抗体化学结合或一同给药另外,在药剂中,这些生长因子可结合有某种毒素,如蓖麻蛋白应调整上述剂量以补偿这种治疗组合物中的附加成分被治疗的患者的进展可用定期测定血样如白细胞计数来监测以下的实施例详细描述辽本发明的各种方法以及灵长类IL-3样多肽新族的各成员实施例1长臂猿IL-3样基因的分离用无尾长臂猿白血病病毒侵染的长臂猿T细胞株UCD-144-MLA(得自National Institute of Health Laboratories)被用植物凝血素和肉豆蔻乙酸佛波尔酯(PHA/PMA)诱变用J.M.Chirgwin et al.,Biochem,185294(1979)的程序从这些细胞中收取全部RNA选择Poly A+mRNA并在10%-30%蔗糖梯度上分部为鉴定编码这一新造血因子的m RNA,将来自UCD-144-MLA细胞株的经蔗糖梯度分部的m RNA的16个等分试样用微注射法注射到爪蟾(Xenopus laveis)卵母细胞中,对所得到的条件培养基用实施例Ⅴ所示的CML检测法测定在有抗人的GM-CSF抗体存在下刺激成白细胞增殖的能力用U.Gubler and B.J.Hoffman,Gene,25263(1983)的程序,将来自蔗糖梯度组分中被鉴定为含编码IL-3样生长因子活性信息的m RNA转变为双链c DNAp XM是一种COS细胞表达载体,含有SV40强化因子,主腺病毒后期启动子,DHFR编码序列,SV40后期信息polyA加入位点和Va Ⅰ基因它被核酸内切酶Xho Ⅰ线性化,在有d TTP存在下用DNA聚合酶Ⅰ大片段处理,与等摩尔量的c DNA连接,DNA的终浓度为100μg/ml由Xho Ⅰ酶解p XM并插入Xho Ⅰ接受的c DNA序列得到的连接产物被转化到E.coli HB101菌株中并在L+Amp板上进行千板培养以产生大约3×103个克隆的文库(可用其它已知的类似的功能性表达载体替换本方法中的p XM)在p XM中的c DNA文库被复制平板培养到硝化纤维素滤纸上从每个滤纸上获得的菌落被刮到L肉汤培养基中,分离出质粒DNA每个DNA样品是从200-300细菌菌落中制备出来的用J.A.Meyers et al.,J.Bacteriol,1271529(1976)的方法纯化该DNA用DEAE介导的DNA转染法,对每10个COS细胞用约5μg质粒DNA的量转染猴COS细胞(ATCC CRL1650),并根据G.G.Wong et al.,Science228810-815(1985)和R.J.Kaufman et al.Mol.Cell Biol.,21304(1982)所述的程序用氯喹处理转染后72小时收集培养基,并按下述实施例Ⅴ所述以人的CML检测法进行检测一群产生的具菌落刺激活性和CML增殖活性并完全抵抗抗血清对GMCSF中和的条件培养基被选来作进一步的分析制备从原始活性群中挑出的单个菌落中得到的质粒DNA,并转染以产生条件培养基对该培养基检测CSF和CML增殖活性分离到负责这种活性的单个克隆这一克隆的c DNA插入体被亚克隆到M13中,并用Sanger二脱氧链终端法序列化(见表Ⅰ)实施例Ⅱ人的IL-3样基因的分离以表Ⅰ的序列作为探针,筛选从人基因组文库(Sau 3A Ⅰ部分酶解克隆到λ载体J1中BamH Ⅰ位点的人DNA)来的1×106克隆鉴定出三个噬菌体中含有与c DNA探针强烈杂交的序列从其中两个噬菌体中来的DNA用核酸内切酶Sau 3 A Ⅰ酶解完全,并被亚克隆到细菌噬菌体λM13的BamH Ⅰ位点以克隆载体mp9含外显子序列的亚克隆通过与长臂猿c DNA杂交而被鉴定有一个亚克隆λCSF-16含有人基因组DNA序列作为大约10kb BglⅡ插入体,如上述已寄存于ATCC人基因全部外显子的完整序列以二脱氧链终端DNA序列法与一批以实施例Ⅰ所述长臂猿基因的序列为基础的寡核苷酸引导子一起进行测定因为人基因外显子的核苷酸序列有96%以上与长臂猿c DNA的序列相同,因此,重建了相应的人c DNA的核苷酸序列11个密码子中核苷酸序列的改变的结果是两个种的多肽的氨基酸的不同(见表Ⅱ)人基因组序列可被从λCSF-16剪切下来并插入到表达载体中,其中的许多类型是哺乳动物,昆虫,酵母,真菌和细菌的表达领域中熟知的例如,用切口分别在人基因区629位和3183位核苷酸的核酸内切酶Sma Ⅰ和Xho Ⅰ酶解寄存的细菌噬菌体可以剪切下人基因组序列所得到的2.5kb的片段含有整个人IL-3-基因编码序列,并且包括“TATAA-相关的”序列于启动子区内,但是缺少“CAT-相关的”序列和在基因3′末端的多腺苷化信号用商品化的连接子序列将该片段的Sam Ⅰ末端转变为Xho Ⅰ用标准分子生物学技术[见Y-C.Yang et al,Cell,473-10(1986)]将该片段亚克隆到Xho Ⅰ-酶解的质粒表达载体p XM中,得到质粒p Y3然后将p Y3在细菌中放大并转染到猴COS-1细胞中,在该细胞内人的基因被转录并且RNA被拼接在如下所述的由于检测IL-3样生物活性的CML检测和人骨髓细胞检测中,被转染的细胞的培养基呈阳性如下所述,使用了长臂猿c DNA探针的Nrothern吸印分析表明存在着一个1kb m RNA,它来自于这些细胞中而其大小与来自外周血淋巴细胞的RNA相同用标准方法从m RNA合成c DNA,并且鉴定出一个具CML活性的克隆从中分离了新的IL-3样生长因子的c DNA实施例Ⅲ人IL-3样生长因子表Ⅱ的编码人IL-3样多肽的c DNA序列也可用除实施例Ⅱ所述以外的其它方法获得例如,根据专业领域熟知方法也可化学合成表Ⅱ的序列其中的一种化学合成法包括重建长臂猿IL-3基因以提供人IL-3编码序列成熟型长臂猿的氨基酸序列与人IL-3蛋白之间的第一个不同氨基酸发生在第82位从长臂猿IL-3基因第82位氨基酸到该基因3′末端的编码序列可通过被化学合成编码人IL-3的DNA序列所取代,从而得到能在适宜的表达系统中产生人IL-3的功能性基因在长臂猿序列中以两个独特的限制性内切酶位点可用于克隆合成性DNA部分,即位于73位氨基酸的AsuⅡ位点和125位氨基酸的Eco R Ⅰ位点用于插入长臂猿基因的DNA“小盒”(cassette)是由酶学法提供从两条在21个碱基对上互补的寡核苷酸来的大约160bp的复式DNA进行从AsuⅡ位点到Eco R Ⅰ位点的合成而得到的完整的复式DNA是用三磷酸脱氧核苷和DNA聚合酶IKlenow片段将互补区延展至寡核苷酸的末端而形成的用AsuⅡ和(或)Eco R Ⅰ酶解完整的复式DNA得到粘性末端用于以后的克隆化第二个合成性DNA“小盒”包括两条从Eco R Ⅰ位点到125位氨基酸全长互补的寡核苷酸,以及在基因末端接着152位氨基酸的终止密码子在该终止密码子上或刚好其后用Eco R Ⅰ粘性末端和适宜的限制性内切酶位点或粘性末端酶解这些寡核苷酸使其克隆到不同的表达载体中合成了两套这种小盒,一套用于哺乳动物表达,另一套用于细菌表达,这是因为所用的真核细胞和原核细胞密码子之间的不同,真核基因中Cp G双链出现率低,以及要保留或需要不同的限制性内切酶位点以用于克隆化这种密码子的优先选择性是专业人员熟知的,例如见T.Maruyama et al.,Nucl.Acids.Res.,14r 151(1986)以下表Ⅲ中给出了为合成这些小盒的粘性末端以及密码子改变的示例然后将小盒克隆到载体p CSF-MLA中以使其转化到带有编码人IL-3样因子的基因的载体中所得的载体用于表达人的因子表ⅢⅠ.密码子改变氨基酸号 细菌表达 哺乳动物表达73 CGT74 CGT75 CCG82 CGT86 AGC87 CTG CTG88 CAA CAA89 AAT91 AGC97 CTG CTG100 CTG CTG102 CCG105 CCG108 ACC ACA109 GCT111 CCG112 ACC ACC113 CGT AGG115 CCG120 GAT127 CGC AGG128 CGC131 ACC ACC137 CTG CTG140 GCT GCT143 CAG CAG145 ACC ACC146 ACC ACC147 CTG CTG152 TTC TTC表Ⅲ(续)Ⅱ.小盒末端小盒号 细菌表达Ⅰ 73 125arg arg…glu phe argT CGT…GAA TTC CGTA GCA…CTT AAG GCA小盒号 哺乳动物表达Ⅰ 71 125asn leu arg arg…glu phe argAAC CTT CGA AGG…GAA TCC CGTCTTG GAA GCT TCC…CTT AGG GCAG小盒号 细菌表达Ⅱ 126 152phe arg pheAA TTC CGC……TTC TAG AACTCGAGACTGCAG GCG……AAG ATC TTGAGCTCTG小盒号 哺乳动物表达Ⅱ 126 152phe arg … pheAA TTC AGG … TTC TAG AACTCGAGAG TCC … AAG ATC TTGAGCTCTTTAA此外,获得人IL-3样生长因子的c DNA序列也可涉及对从组织来源的c DNA进行克隆化的方法根据T.Maniatis等人(同上)的方法将表Ⅰ的长臂猿c DNA序列作为探针并以外周血淋巴细胞作为人的来源,分离编码该人IL-3样多肽的m RNAPoly A RNA从外舟血淋巴细胞中制出,转变为c DNA,克隆为噬菌体或质粒的c DNA文库通过与作为DNA探针的表Ⅰ的长臂猿编码序列杂交,可以鉴定人的c DNA克隆和测定IL-3样生物学活性此外,可用于筛选人的IL-3样c DNA的组织源包括脾、肝、胸腺、扁桃体、肾,以及其它可从活体解剖和尸解中得到的新鲜组织特别重要的是那些由肿瘤引起造血细胞增多如白血病的组织此外,其来源还有那些寄存于保藏中心如ATCC的细胞系,以及来自其他国家机构或私人的细胞系细胞系举例有转化的T或B细胞系,以及那些并非来自造血细胞源但又产生促红细胞生成素的细胞系为了表达人的IL-3样多肽,将其编码c DNA转移到适宜的表达载体中,如p CD或p XM,并用如上所述的常规遗传工程技术将其引入所选择的宿主细胞中具生物活性的重组人IL-3样多肽的一种哺乳动物表达系统是稳定地转化的CHO细胞然而,活性多肽也可由E.coli或其他细菌在细胞内或细胞外产生如实施例Ⅳ所述,酵母或昆虫细胞也可用作表达体系本发明的另一种表达这种人IL-3样多肽的方法是使用从含完整人基因组基因的λCSF-16来的BglⅡ片段构建表达该多肽的哺乳动物细胞系,例如PCT WO85/20610关于人促红细胞生成素所述此外,这种人基因组基因可用适当的启动子和工作信号子构建以用于在其它一些异源系统中进行表达,例如用昆虫启动子构建昆虫细胞培养系同样,该基因组基因也可在酵母或其它真核系统中得到表达实施例ⅣIL-3样生长因子的表达质粒p CSF-MLA可以通过象上面所述的那样将表Ⅰ的长臂猿序列插入到Xho Ⅰ水解过的p XM中而被很容易地构建用于哺乳动物表达的带有人序列的质粒p SHIL-3-1可以象上面实例Ⅲ中所述的那样通过人工合成的方法构建另一种质粒p Y3也按上述方法制备然后按常规技术,将所有这些带有灵长类IL-3样生长因子的质粒转化到经过选择的宿主细胞中,以表达多肽A.哺乳动物细胞表达为了获得用于下面所述检测的IL-3样因子的表达,将p SHIL-3-1和p CSF-MLA转染到COS细胞上,用于转染COS细胞的条件培养基含有高水平的所述生长因子活性这里所述的哺乳动物细胞表达载体可以采用本领域技术人员所熟知的技术进行人工合成该载体的成分,如复制子、选择基因、增强子、启动子等,可从天然来源获得,或按已知程序进行人工合成见Kaufman等J.Mol.Biol.,159511-521(1982);及Kaufman,Proc.Natl.Acad.Sci.,U.S.A.,82689-693(1985)哺乳动物宿主细胞的例子主要有灵长类动物细胞系和啮齿类动物细胞系,包括转化了的细胞系正常的二倍体细胞,得自初生细胞的体外培养物的细胞株以及初生分离块都是适合的只要选择基因是显性作用的,那么候选细胞就不必为在选择基因中为遗传缺陷型为了采用常规方法使载体DNA稳定整合以及随后的整合载体DNA的放大,可以使用CHO细胞或者,该载体DNA也可以包括所有或部分牛乳头瘤病毒基因组(Lusky等,Cell,36391-401(1984)],并且将其作为一种稳定的游离成分送入象C127鼠细胞一类细胞系中其它的合适哺乳动物细胞系包括(但不仅限于)He La,COS-1猴细胞,鼠L-929细胞,得自Swiss,Balb-c或NIH小鼠的3T3细胞系,BHK或Hak仓鼠细胞系然后采用标准的免疫学或酶促测定法筛选表达了产物的稳定转化体采用Southern吸印等标准方法可以测定编码不同蛋白质的DNA的存在将表达载体DNA引入合适宿主细胞(如COS-1猴细胞)数天之后,在未通过对培养基中的蛋白质采用活性或免疫学测定进行筛选的情况下,测定编码变种的DNA的短暂表达本领域熟练技术人员也可以使用其它非常熟知的重组遗传工程技术和其它已知载体[如p JL3和p JL4(Gough等,EMBO J.4645-653(1985))以及p MT2(Starting with pMT2-VMF,ATCC#67122;见PCT application PCT/VS87100033)],例如用Xho Ⅰ来切割得自相应质粒的表Ⅰ或表Ⅱ的DNA序列,来构建与p CSF-MLA和p SHIL-3-1相似的其它哺乳动物表达载体将这些载体转化进合适的宿主细胞就可以导致IL-3样生长因子的表达B.细菌表达系统类似地,本领域熟练技术人员也可以通过用细菌的序列消除或取代位于编码序列旁边的哺乳动物调节系统来操作表Ⅰ和Ⅱ的序列,从而创造通过细菌细胞在细胞内或细胞外表达本发明的IL-3样因子的细菌载体编码该因子的DNA可按实例Ⅲ进一步进行修饰,以使其含有用于细菌表达的不同密码子(象现有技术所已知的那样)该序列最好也象现有技术所已知的那样通过操作连接到编码分泌前导多肽的核苷酸序列骨架上,而这种前导多肽准许细菌表达、分泌、加工成熟的变种蛋白然后采用已知方法,对在细菌宿主细胞中表达的化合物进行回收,纯化和/或就生理化学、生物化学和/或临床参数进行性质鉴定为了构建这样一个用于细菌表达的细菌载体,从长臂猿c DNA和合成细菌盒(如实例Ⅲ所述)构建了一种部分合成的人IL-3样DNA序列将该序列放入经Ndel/Xba Ⅰ酶解过的载体pal 181中,该载体保存于ATCC,登记号为40134将所产生的载体p PLHIL-3-181转染到大肠杆菌中,然后按照PCT申请86/00639所公布的用于GM-CSF的条件进行培养大肠杆菌的IL-3样因子是在一种不溶性的内含体中产生为了从其中溶解和得到蛋白质,接着进行下列步骤将大约50克的细胞冻膏重新悬浮在缓冲液A中[含120毫升50mM Tris-HCl,pH7.5,0.1mM苯基·甲基磺酰氟(PMSF)和2mM的二硫苏糖醇(DTT)]使用French压力机或Matin Gaulin阀(10,000psi或更大)来破碎细胞然后以20,000xg的转速将破碎了的细胞离心30分钟,沉淀细胞碎片,其中含有内含体沉淀物通过French压力机重新悬浮于55%的蔗糖(溶于缓冲液A)中,再次以30,000xg的转速离心30分钟含有IL-3样因子的内含体沉淀物重新悬浮于55%溶于缓冲液A的蔗糖中,且分布在60、65和70%蔗糖的阶梯式梯度处以150,000xg的转速将该梯度离心2小时收集沉降到65%层的IL-3样因子内含体为了重新恢复和重新折叠现在近似80%纯的IL-3样因子,将这些内含体以2-3毫克/毫升的浓度重新悬浮在8M尿素中用缓冲液B(50mM Tris-HCl,pH8.0,0.1mM PMSF,2mM DTT和0.1mM乙二胺四乙酸(EDTA))将含有蛋白质的尿素溶液稀释至最终浓度为3M尿素(其中IL-3的浓度近似为1微克/毫升)将含有6mM还原型谷胱甘肽和6mM氧化型谷胱甘肽的一种氧化/还原缓冲液加到尿酸溶液中,于20℃保温2小时然后将3M尿素溶液向缓冲液B过夜透析,除去尿素最后离心IL-3蛋白质溶液,除去任何沉淀物到此时,IL-3样因子被重新折叠且其纯度约为85%然后将重新折叠的IL-3样因子对50mM MES缓冲液(pH6.0,含有0.1mM EDTA)透析,再上到用同样缓冲液平衡过的DEAE-Sepharose柱上流过DEAE的IL-3样因子的纯度近似为99%这一步也除去了任何热原用200mM的乙酸钠缓冲液(pH4.0)将流过DEAE的IL-3的pH调至5.0再将IL-3样因子上到磺酰基丙基-Sepharose柱上IL-3样因子与SP-Sepharose结合后,用含有缓冲液的乙酸钠冲洗至此,IL-3样因子为纯品且正确转叠在CML测定中,该人IL-3样因子具有1-3×107CML单位/毫克的比活与此类似,表Ⅰ或表Ⅱ的编码序列可以用Xho Ⅰ从p CSF-MLA或p SHIL-3-1中切出,进行进一步操作(如,连接到其它已知连接物上,或者通过从其中删掉非编码序列对它进行修饰,或者用其它已知技术改变其中的核苷酸)经修饰的IL-3样编码序列就可以插进已知细菌载体中,所用的方法可以象T.Tancguchi等在Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.775230-5233上所述的那样然后将这一典型细菌体转化到细菌宿主细胞中,从而使IL-3样因子表达产生IL-3样因子的细菌细胞外表达的战略见欧洲专利申请EPA177,343C.昆虫细胞表达可按相似方法进行操作来构建在昆虫细胞中进行表达的昆虫载体(如见公布的欧洲专利申请155,476中所述的方法)通过使用用于本发明的蛋白质的酵母细胞内或酵母细胞外表达的酵母调节序列,也可以构建酵母载体(如见公布的PCT申请WO86 00639和欧洲专利申请EP123,289中所述的方法)实施例Ⅴ高水平表达灵长类IL-3样生长因子的CHO细胞系的构建从哺乳动物细胞产生高水平的新型灵长类IL-3样多肽族的一种方法包括构建含有多拷贝的异源IL-3样基因的细胞异源基因可被连接到一可放大的标记物(如二氢叶酸还原酶,DHFR)上,按照Kaufman & Sharp,J.Mol.Biol.1982(出处同上)的方法,根据在增加氨甲喋呤(MTX)浓度条件下的繁殖可筛选含有增加基因拷贝的细胞这一方式可被各种不同细胞型使用例如,p Y3含有人IL-3样基因,该基因在操作中与能够表达的其它质粒序列相联系通过磷酸钙共沉和转染,可以将p Y3和DHFR表达质粒p Ad A26 SV(A)3(Kaufman & Sharp,Mol.Cell B.,3(9)1598-1608(1983)一起引入DHFR缺乏的CHO细胞或者,象前面提到的那样将该基因引入p MT2,用得到的载体代替p Y3和p Ad A26 SV(A)3在含有透析过的牛胎儿血清的α培养基中筛选生长的表达DHFR转化株,然后按照Kaufman等在Mol.Cell B.,51750(1983)上所述的方法,通过在增大MTX浓度(依次为0.02,0.2,1.0和5μM MTX)的条件下的生长,来筛选放大了的转化株将转化株克隆,通过CML测定来监测生物活性IL-3样多肽的表达IL-3样多肽的表达应随着MTX抗性水平的增强而增强接着可采取类似步骤,以产生这一IL-3样多肽族的其它成员,包括长臂猿IL-3样多肽实施例ⅥIL-3样多肽的生物活性下面的测定都是用长臂猿多肽和人多肽作为本发明的新型灵长类动物IL-3样多肽族的代表成员来完成的但是,该族的其它成员在这些同样测定或其它测定中将显示IL-3样生物特性,它取决于各个多肽所显示IL-3样生物特性的数量A.CML测定CML测定基本上是按照Blood,63(4)904-111(1984)上所述的方法完成原种细胞得自冰冻袋中的处于稳定状态的CML患者的外周血将该袋融化,以每小瓶15×106个细胞的浓度分装成500等分后重新冷冻用这些“CML8-3”细胞来测试IL-3样多肽的IL-3样活性在测定的前一天将其中一个小瓶于37℃迅速融化将小瓶中的内含物转移到15毫升试管中,且用RPM Ⅰ中的5%Hi Human AB Serum(GIBCO,RPM I1640)[HAB/RPM I]洗涤两次将细胞在5%CO2、37℃的条件下于5%Hi HAB/R PM I中过夜培养第二天,从培养物中取出细胞,菲科尔比(ficolled)、洗涤、重新计数后置于一边将含有待测物质的100微升10%H IFC S2/RPM I培养基置于一微滴定平板的每一孔中将上面制备的细胞通过离心沉淀下去,然后以1.3-2×105个细胞/微升的浓度重新悬浮在10%H IFCS/RPMI中将100微升细胞加到每一孔中,在抗-人GMCSF抗体存在或缺乏的条件下,将其于37℃在5%CO2中培养48-72小时然后向每孔中加入0.5μci的3H-胸苷,于37℃培养6小时利用一种过滤多功能装置将细胞收集在GFC型C过滤器滤纸上(Schleicher-Schuller),用磷酸盐缓冲过的盐水洗涤后干燥然后将滤器沉浸在闪烁液中,对3H的吸收进行计数根据所测得的胸苷吸收,发现在这一测定中长臂猿IL-3样生长因子和人IL-3样生长因子在刺激白血病胚细胞的繁殖上都具有活性B.骨髓测定使用非粘连骨髓细胞的人骨髓测定是按G.G.Wong等所述的方法(出处同前)来完成的在这一测定中,发现用于长臂猿和人因子的条件培养基能够有效地产生明显的粘性白细胞型谱系的小集落在染色琼脂培养物的形态学测定时也产生巨噬细胞、粒性白细胞-巨噬细胞和嗜曙红细胞集落当在促红细胞生成素存在的情况下完成这一测定时,血红细胞集落的产生证实了条件培养基维持红色祖先细胞生长的能力每当将GM-CSF与在人骨髓测定中的IL-3样多肽比较时,发现当两种肽都处于有促红细胞生成素存在的条件下,IL-3样多肽比GM-CSF能够维持更多的集落的形成多数由GM-CSF维持的集落是单一谱系;而本发明的多肽维持多谱系集落的形成类似地,在胚细胞集落形成测定中,IL-3样多肽产生更大量的多谱系胚细胞,而去同一测定中GM-CSF产生非常少的次级集落C.KG-1细胞测定KG-1测定是按照G.G.Wong等所述的方法(出处同前)来完成在这一测定中,按本发明所产生的新型灵长类IL-3样生长因子族中的长臂猿IL-3样多肽是有活性的D.混合测定在一抗体依赖的细胞介导的细胞毒性测定中,本发明IL-3样多肽刺激嗜曙红细胞按剂量依赖方式杀死抗体包被的肿瘤靶细胞该多肽另外还刺激嗜曙红细胞吞噬血清调理的面包酵母,并且直接刺激嗜曙红细胞产生过氧化阴离子在初步研究中,是将本发明的IL-3样因子注入健康猴子,再观察白细胞计数,在血小板计数和嗜曙红细胞数上都观察到可重复的增加这些初步结果在人和长臂猿IL-3样因子中都被观察到实施例Ⅶ得自COS细胞条件培养基的IL-3样多肽的纯化现在使用下列方法从COS细胞获得同源IL-3样蛋白质(如上面实例Ⅳ所述)A.离子交换法COS细胞条件培养基[DMEM,0.5%FBS以200毫克/毫升的总蛋白质浓度加入一滚柱瓶中]含有大约2-3微克/毫升的IL-3样多肽用水稀释培养基至其传导率低于8.0ms/cm2-离子交换药筒QAE Zeta Prep]用大约500毫升0.1M Tris-HCl(pH8.0)于4℃平衡,然后改用2升40mM Tris-HCl(pH7.4)培养基按40毫升/分的流量上柱,收集未结合的部分用毫升40mM Tris-HCl洗柱,直至未有进一步的活性被洗掉为止将未结合的部分浓缩在一透滤单位膜[diafilteation unit maembrane,Amicon YM-10]B.晶体状外源凝集素柱法于4℃在20mM Tris(pH7.4)、0.05% Tween-20[缓冲液Ⅰ]中平衡晶体状外源凝集素柱,然后以每小时1柱体积的量上料用缓冲液Ⅰ洗柱以除去非特异性结合的蛋白质;然后用缓冲液Ⅰ加0.2M α-甲基吡喃甘露糖苷洗脱结合蛋白收集洗脱部分C.逆相高压液相层析法在室温下按照下面所述方法将这一IL-3样多肽制品进行逆相高压液相层析将IL-3样制品注射到在100%缓冲液A中平衡过的RPHPLC柱(C4 Vydac)上缓冲液A为溶于水中的0.1%三氟乙酸(TFA],缓冲液B为溶于95%乙腈的0.1%TFA梯度为每分钟0.2%从45%至70%缓冲液B从这一梯度收集的部分是46.8%至47.5%缓冲液B对这些部分迅速抽真空,以除去乙腈在第二次逆相HPLC步骤中,缓冲液A是0.15%溶于水的HFBA,缓冲液B是0.15%溶于95%乙腈的七氟丁酸[HFBA]其梯度为每分钟0.2%从45%至70%缓冲液B从这一步骤中所收集的部分是49%至51%缓冲液B从HPLC洗脱出的这一部分是无热原的实施例ⅧIL-3样多肽的分析A.SD S-聚丙烯酰胺凝胶电泳接着R.J.Kaufman和P.A.Sharp.的方法[J.Mol.Biol.159601-621(1982)],将35S-甲硫氨酸通过代谢整合到由p CSF-MLA转染的COS细胞和由p Y3转染的COS细胞制备的多肽中通过对由COS-1细胞分泌的标记蛋白进行SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(还原条件)[U.K.Laemmli,Nature227680-685(1970)],发现了对于长臂猿和人因子都具有14kd至35kd表现分子量的多肽的分布这一分布在伪转染对照样品中是不存在的尤其是,发现CHO产生的人IL-3样因子分布于21至32kd之间,这表明它比COS细胞产生的人因子具有更大程度的糖基化,后考主要分布21至28kd经实例Ⅵ的纯化步骤后用银染色,平均分子量21,000和25,000的两条主要带似乎具有近似等量的两种因子这两带的不同归因于N-连接的糖基化的不同B.等电聚焦通过对实例Ⅶ的纯化多肽进行天然等电聚焦发现长臂猿和人多肽都有四个种类其pH值的范围在pH6.0至pH7.6之间C.Superose 6快速蛋白质液体层析将从HPLC得到的纯化部分在20mM Tris(pH7.4)、200mM NaCl和0.05%吐温-20中的凝胶过滤柱(Superose 6)上走柱通过这一柱层析,对于两种因子都发现了一个表现分子量为43kd的突峰D.在CML测定中的比活性在上面所述的CML测定中作为例子的长臂猿IL-3样因子的比活在2×106-1×107稀释单位/每毫克多肽的范围内,其平均值为8×106稀释单位/每毫克多肽发现在实例Ⅳ(B)中所述的由细菌产生的人多肽具有1-3×10稀释单位/每毫克多肽的比活CHO产生的人IL-3样因子在这一测定中具有2-3×106单位/每毫克蛋白的比活COS产生的人IL-3样因子的比活为每毫克约1-2×107单位一个稀释单位(或CML单位)是指在CML测定中达到最大刺激的一半的因子的稀释E.N-末端分析长臂猿多肽的N-末端序列的分析是通过自动Edman降解完成的,它表明该因子的纯度为98%F.N-聚糖酶处理用N-聚糖酶处理在COS细胞中产生的人和长臂猿因子,该酶水解N-连接的多糖部分通过这一方法显示每一因子都被纯化在凝胶上的每个因子的14-35kd涂片,对于长臂猿因子减为15kd的单一带,对于人因子减为20.5kd的单一带可以预期,本领域普通技术人员在参考了前面所述的较好实例后,在实施本发明的过程中可作出各种改进和变动,据信这些改进和变动都包括在本发明附带
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专利名称:一族新的灵长类造血生长因子的制作方法本发明涉及一族新的灵长类IL-3样造血生长因子,以及用遗传工程重组技术生产这种造血因子的方法。红细胞生成素,即造血生长因子,是促进造血细胞生存,生长和分化的蛋白。集落刺激因子(CSFS)是这些造血生长因子的子集,其特征在于能够维持造血细胞集落在体外生长,这些造血细胞起源于骨髓,胎儿肝脏,和其它造血器官的祖先细胞。某些红细胞生成素的生物化学和生物学鉴定和特性描述受到少量天然存在因素的阻碍,这些因素的来源如血液和尿。最近已经分子克隆了某些这种红细胞生成素,进行异种表达并纯化为均一性。[D.Metcalf,“The Molecular Biology and Functions of the Granulocyte-Macrophage Colony Stimulating Factors”,Blood,67(2)257-267(1986).]其中红细胞生成素是人和鼠的GM-CSF,人的G-CSF,人的CSF-1和鼠的IL-3。已经证明人的GM-CSF[R,Donahue et.al.,Nature,321872-875(1986)],鼠的IL-3[J.Kindler et al.Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,831001-1005(1986);Metcalfetal.,Blood,6846-57(1986)]和人的G-CSF[K.Welteet al.,J.Exp.Med.,165941-948(1987)]在体内对红细胞生成有效。在此之前已经发现鼠蛋白IL-3在人的系统中没有复制。[D.R.Cohen et al.,Nucl.Acids Res.,143641(1986).]。本发明提供一族基本上没有其它灵长类蛋白的灵长类IL-3样生长因子,其特征是肽序列相同于或基本相似于下面表Ⅰ和Ⅱ中所示的氨基酸序列。这些序列可用表中所示的DNA序列或能够与多肽杂交和编码具有IL-3样生物学特性的多肽的序列或其它各种各样可证实这种特性的修饰序列所编码。这些多肽也以IL-3样生物学特性为特征。作为一个实例,本发明提供一种基本上不与其它人的多肽结合的人的多肽,其特征为肽序列与表Ⅱ所示的序列相同或基本相同并至少具有一种IL-3样生物学特性。作为本发明多肽的另一实例的是基本上不与其它灵长类多肽结合的长臂猿多肽,其特征为肽序列与表Ⅰ所示的序列相同或基本相同并至少具有一种IL-3样生物学特性。本发明多肽的特征在于至少具有一种IL-3样特性,这些特性如下a.用还原SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳测得表观分子量约为14~35千道尔顿;b.在标准人骨髓测定中能够以10-100微微克分子的浓度刺激各种谱系的多种类型造血细胞集落的形成;c.在CML测定中能够以10-100微微克分子的浓度刺激CML细胞增殖;d.等电点为pH6.0~pH7.6;e.在Superose 6凝胶过滤柱上43kd处有一个单一的尖峰;
f.在N-聚糖酶处理之后的凝胶上有一个单一的20.5kd的条带;和g.对用Edman降解法分析N-末端的污染水平不大于2%。
另外,本发明提供含有有效治疗剂量的一种或多种本发明的多肽的药用组合物。这些组合物可用于治疗许多疾病的方法,这些疾病的特点是缺乏造血细胞。按照本发明的这些方法需要给病人服用有效量的至少一种在此所述的多肽。
这样的治疗方法可用于治疗下列疾病,如白细胞减少,血小板减少,贫血,B细胞缺乏,T细胞缺乏,细菌感染和病毒感染,包括在骨髓移殖之后免疫细胞或造血细胞缺乏。本发明的这些方法还可包括与IL-3样多肽同时或相继服用有效量的至少一种其它的红细胞生成素,白细胞介素,或生长因子。作为这种应用的典型的红细胞生成素包括GM-CSF,G-CSF,CSF-1或促红细胞生成素。典型的白细胞介素是IL-1,IL-2,IL-4或IL-6。这些方法也可使用生长因子(如B细胞生长因子),B细胞分化因子,或嗜曙红细胞分化因子。
本发明的再一方面是可在表达基础上编码具有至少一种IL-3样生物学特性的灵长类多肽的DNA序列。这样的序列包括表Ⅰ或Ⅱ中所示的在5′-3′方向上的核苷酸序列。此外本发明还包括在严格条件下可与表Ⅰ或Ⅱ的DNA序列杂交的DNA序列或者在非严格条件下可与所述DNA序列杂交的DNA序列,该序列可在表达基础上编码具有至少一种IL-3样生物学特性的蛋白。表Ⅰ和Ⅱ序列的等位基因变异,无论这样的核苷酸变化是否引起肽序列的变化,连同它的其它类似物和衍生物也都包括在本发明中。
本发明的另一方面是含有如上所述DNA序列的载体与表达控制序列有效的结合。这样的载体可用于生产灵长类IL-3样多肽的新方法,其中用编码IL-3样多肽表达的DNA序列转化的细胞系与表达控制序列有效的结合进行培养。所述的这种方法可使用许多已知细胞作为宿主细胞来表达多肽。目前较好的细胞系是哺乳动物细胞系和细菌细胞。
通过对下面的较好实施例进行详细叙述,本发明的其它方面和优点将更加清楚。
本发明所提供的这族灵长类IL-3样生长因子基本上不与其它灵长类的蛋白质结合,其特征在于氨基酸序列与下面表Ⅰ和Ⅱ所示的序列相同或基本相似。这族新的生长因子各成员的特征也是具有至少一种IL-3样生长因子的生物学特性,如下所述。最好证明这族本发明的生长因子中的任一成员具有一种以上的IL-3样生物学特性。
在此定义“IL-3样生物学特性”一词包括一种或多种下列生物学特点和在活体内及体外的活性。一种这样的特性是维持供给红细胞样,淋巴样,和髓样谱系的祖先细胞的生长和分化。例如,在标准人骨髓测定中,IL-3样生物学特性是粒细胞型集落和红细胞样裂解的刺激作用。另一这样的特性是与早期多潜在干细胞相互作用。
IL-3样生物学特性是维持多能前体细胞的生长。另一特性是能够刺激慢性骨髓白血病(CML)细胞增殖。IL-3样生物学特性也可刺激肥大细胞的增殖。IL-3样生长因子还可维持依赖各种因子的细胞系的生长和(或)诱导20-α-甾类脱氢酶(20-α-SPH)和Thy-1抗原的表达。IL-3样的另一生物学特性是刺激KG-1细胞集落形成和(或)刺激在脾骨髓培养物中组胺合成的增加。IL-3还有一种生物学特性就是用还原十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳测得表观分子量约为14~35kd。IL-3的其它生物学特性已在本领域揭示了。
表Ⅰ和Ⅱ所示的特定的肽序列是本发明生长因子族中的两个典型的成员。表Ⅰ的865bp DNA序列是从无尾长臂猿白血病病毒感染的长臂猿T-细胞系UCD-144-MLA的c DNA表达库分离出来的[T.G.Kuwakami et al.,Nature,235170(1972)]。该序列含有一个单一的456个核苷酸的长开放阅读骨架,它编码大约152个氨基酸的蛋白质,称为CSF-80,并且通过高度疏水序列(leu leu leu leu gln leu leu)表明该序列包含一个常规前导分泌序列。成熟蛋白质开始于表Ⅰ中的第20号氨基酸,即丙氨酸。编码区含有3个半胱氨酸,两个在成熟蛋白质中,由此表明有一个二硫键。通过特征序列Asn-X-Ser或Asn-X-Thr说明有两个潜在的天冬酰胺连接的糖基化位点。通过编码序列所显示的大小和糖基化图形是淋巴激活素样蛋白质的特点。865bp区剩余的非编码部分在天然宿主的转录中可能具有调节作用。该序列的3′端也含有包括几个重复序列ATTTA的AT富集片段,被认为与RNA信息稳定性有关[见G.Shaw and R.Kamen,Cell,46(5)659-677(1986)]。
表Ⅰ
用表Ⅰ的序列作为探针从人的基因组库中得到了表Ⅱ的674bp DNA序列[J.J.Toole et al.,Nature,312342-346(1984)]。表Ⅱ的DNA序列最初通过将人的基因组序列的外显子拼接在一起进行构建,通过与表Ⅰ的长臂猿IL-3样多肽的DNA序列比较鉴定了该序列。这种通过人的cDNA克隆的mRNA分析证实的人的序列也可编码大约152个氨基酸的多肽,该多肽是该族灵长类蛋白质中的一员。这种人的多肽包括由高度疏水序列(leu leu leu leu gln leu leu)所示的常规前导分泌序列。成熟多肽开始于表Ⅱ的第20号氨基酸,即丙氨酸。在成熟蛋白质中编码区含有2个半胺氨酸,表明有一个二硫键。通过特征序列Asn-X-Ser说明有两个潜在的无冬酰胺连接的糖基化位点。674bp序列的剩余非编码部分在天然宿主的转录中可能具有调节作用。
人基因[表Ⅱ]外显子的核苷酸序列96%以上与长臂猿基因[表Ⅰ]的DNA序列同源。11个密码子核苷酸序列的变化可导致长臂猿和人蛋白质的氨基酸不同。表Ⅱ序列上面的核苷酸,表明长臂猿序列不同于相关的人序列的位点。与之相似,下面的氨基酸,即人的氨基酸序列表明长臂猿序列不同之处。箭头表明在人基因组序列中外显子和内含子连接的位点。
华盛顿特区的国立生物医学服务结构(National Biomedical Services of Washington,D.C.)的计算机检索揭示了长臂猿和人的IL-3样序列在氨基酸水平上约有29%同源于鼠的IL-3DNA序列,在核苷酸水平上约有45%与鼠的IL-3DNA序列同源,这是M.C.Fung等人在Nature 307233-237(1984)中公开的。人的IL-3样基因的外显子结构与鼠的IL-3编码区相比是类似的。
表Ⅰ所述的新的865bp c DNA序列包括在大肠杆菌HB101质粒中,已于1986年7月11日贮存在A.T.C.C.12301 Parklawn Dr.,Rockville,MD并给定注册号为ATCC 67154。其c DNA序列列于下面的表Ⅱ中的新型基因组序列包括在入噬菌体中,它也已于1986年8月7日贮存在A.T.C.C.并给定注册号为ATCC 40246。包括在大肠杆菌HB101的P SH IL-3-1质粒中的人的IL-3 DNA已于1987年2月24日贮存在ATCC.并给定注册号为ATCC67326。
通过35S标记的蛋白质的SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳分析进一步描述了典型的人和长臂猿IL-3样多肽的特征,35S-标记的蛋白质来自于转染的COS细胞,见如下所述的实施例。这两种多肽的大小与表观分子量约为14kd-35kd,更确切地说为18kd-30kd的分子种类是异源的。这些典型IL-3样因子的这个分子量范围被认为起因于纯化COS细胞产生分子的糖基化变化。10-100微微克分子浓度的纯化蛋白质在体外人骨髓测定中导致小粒性白细胞型集落的形成。此外,在这些人骨髓测定中促红细胞生成素存在下,这两种多肽可维持红细胞和髓样祖先细胞的生长在类似的活性水平上。因此这些IL-3样因子都是多CSFs。这些IL-3样因子也导致来自患有CML患者的成白细胞的增殖。这些多肽还能够刺激副卫细胞和成熟细胞,如单核细胞,产生其它造血样因子,这些因子又刺激其它造血细胞集落的形成,以及其它造血型细胞的活性。
全部或部分复制表Ⅰ和Ⅱ的氨基酸残基的连续序列的合成多肽也包括在本发明中。这些序列,由于与表Ⅰ和Ⅱ的IL-3样多肽具有共同的一级,二级或三级结构和构象特点,所以可能与此共同具有IL-3样生物学特性。因此,它们可被用作为在治疗和免疫学方法中天然存在的灵长类IL-3样多肽的生物学活性或免疫学替代物。
本发明所提供的这族IL-3样生长因子也包括由与表Ⅰ和Ⅱ相似的序列所编码的因子,但可对这些因子进行自然修饰或有意加以修饰。例如,一种这样修饰的人序列是在表Ⅱ中所说明的人cDNA序列,修饰之处是由三联体CCC编码的27号氨基酸-脯氨酸,而不是在表中该位置上出现的由三联体TCC所编码的丝氨酸。这个典型的修饰的IL-3样序列可产生一种活性人IL-3样因子,它作为p Huc IL3-2包括在大肠杆菌HB101中,于1987年2月13日贮存在ATCC,注册号为ATCC67319。
肽或序列的其它修饰是本领域专业人员可用已知技术进行的。这些IL-3样相关序列的重要的特异修饰可包括用其它氨基酸代替每一编码序列中的两个半胱氨酸残基之一或二者。最好两个半胱氨酸都用其它氨基酸,如丝氨酸,代替,去掉二硫桥。这种取代的诱变技术对于本领域的专业人员来说是人所皆知的。[见,美国专利4,518,584号。]本发明在此所述的其它IL-3样因子的序列的特异性突变包括对一个或两个糖基化位点的修饰。表Ⅰ和表Ⅱ中给出了由于在IL-3样因子序列中天冬酰胺连接的糖基化识别位点发生一个或两个氨基酸取代或缺失所得到的糖基化缺乏或部分糖基化的结果。天冬酰胺连接的糖基化识别位点包括一个三肽序列,该肽能被适宜的细胞糖基化酶特异性地识别。该三肽序列是天冬酰胺-X-苏氨酸或是天冬酰胺-X-丝氨酸,而X一般可是任何氨基酸。在糖基化识别位点的第一或第三位氨基酸中之一或两者上的各种氨基酸取代或缺失(和/或在第二位上的氨基酸缺失)导致修饰过的三肽序列的非糖基化作用。
例如,表Ⅰ中序列的Asn34可由谷氨酸酰胺在一个这样修饰的IL-3样因子中取代。所得到的因子(Gln34)应该仅含一个天冬酰胺连接的糖基部分(位于Asn89),而不是两个。本专业领域的普通技术人员都将会知道,在34位上取代另一个氨基酸,和/或在糖基化识别位点之内于其它位点取代另一个氨基酸,例如于Ser36插入缬氨酸,可以制备出具有同样Asn89单糖基化的糖蛋白类似物。同样,89位的Asn和/或91位的Ser可由诱变技术转变为其它氨基酸以使因子在该位点上去糖基化。此外,按上述也可使两个位点均改变。对糖基化位点的这种修饰也可用于修饰表Ⅱ中各序列[见A.Miyajima et al.,EMBO J.5(6)1993-1197(1986)和下述的实施例Ⅳ]。本专业领域的普通技术人员在得到此处的揭示后,可以很容易地得到表Ⅰ和表Ⅱ中各序列的其它类似物和衍生物。这类显而易见的修饰包括在本发明的范围之内。
本发明还包括新的DNA序列,它不与编码其它灵长类蛋白的DNA序列结合,并且编码表达灵长类IL-3样多肽或生长因子。这些DNA序列包括在表Ⅰ和表Ⅱ中所述的从5′到3′方向的序列和在严紧控制杂交条件下[见Maniatis et al.,Molecular Cloning(A.Laboratory Manual),Cold Spring Harbor Laboratory
,pagrs 387 to 389]与表Ⅰ和表Ⅱ中各DNA序列杂交的序列。这种严紧控制杂交条件举例如在65℃,4×SSC杂交,然后在65℃,0.1XSSC洗一小时。另外的严紧控制杂交条件如在50%甲酰胺中以42℃4×SSC杂交。
在松驰调控杂交条件下与表Ⅰ或Ⅱ各序列杂交,并且编码表达具灵长类IL-3样生物学性质的生长因子的DNA序列也编码这一族新的生长因子的各成员。这种非严紧控制杂交条件举例如50℃,4×SSC,或用30-40%甲酰胺于42℃杂交。例如,与表Ⅰ和(或)表Ⅱ的序列共有重要同源区,如共有糖基化位点或二硫键的并且编码具一种或更多种IL-3样生物学性质的灵长类蛋白的DNA序列,很明显是编码这一新族生长因子的各成员的,甚至当这种DNA序列不是严紧控制地与表Ⅰ或表Ⅱ的序列相杂交时也是如此。
相似地,能编码由表Ⅰ或Ⅱ的序列编码的灵长类IL-3样多肽,但由于遗传密码的简并性或等位变异(在一种群中自然发生的碱基改变,它可能造成也可能不造成氨基酸的改变)而造成的在密码子序列上有所不同的那些DNA序列,也能编码此处所述的这一族新的生长因子的各成员。本发明还包括由于点突变或为提高活性,延长半衰期或提高由此所编码的多肽生产进行诱导修饰而造成的表Ⅰ和表Ⅱ各DNA序列的改变序列。
本发明的另一方面提供了生产这一新族灵长类IL-3样生长因子的新方法。本发明的方法包括培养适宜的细胞或细胞系,它们是已经被在已知的调节序列控制下编码表达新的灵长类IL-3样多肽的DNA序列所转化。适宜的细胞或细胞系可以是哺乳动物细胞,如中华仓鼠卵巢细胞(CHO)。对适宜的哺乳动物宿主细胞的选择,以及转化、培养、放大、筛选、生产产物和纯化等方法均为已知。例如见Gething and Sambrook,Nature,293620-625(1981),或Kaufman et al.,Mol.Cell.Biol.Biol.,5(7)1750-1759(1985)或Howley et al.,U.S.Patent 4,419,446。另一种适宜的哺乳动物细胞系在实施例中给出,是猴COS-1细胞系。另一种相似的有用哺乳动物细胞系是CV-1细胞系。
另外适宜作为本发明宿主细胞的是细菌细胞。例如,在生物
权利要求
1.一种基本上不与其它人的多肽结合的人的多肽,其特征在于肽序列与表Ⅱ所示的序列相同或基本相同并具有至少一种ⅠL-3样生物学特性。
2.一种基本上不与其它灵长类多肽结合的灵长类多肽,其特征在于肽序列与表Ⅰ所示的序列相同或基本相同并具有至少一种IL-3样生物学特性。
3.按照权利要求
1或2所述的多肽,其中所述的特性选自下列一组a.用还原SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳测得表观分子量约为14~35千道尔顿;b.在标准人骨髓测定中能够以10-100微微克分子的浓度刺激各种谱系的多种类型造血细胞集落的形成;c.在CML测定中能够以10-100微微克分子的浓度刺激CML细胞增殖;d.等电点为pH6.0~pH7.6;e.在Superose 6凝胶过滤柱上43kd处有一个单一的尖峰;f.在N-聚糖酶处理之后的凝胶上有一个单一的20.5kd的条带;和g.对用Edman降解法分析N-末端的污染水平不大于2%。
4.一个DNA序列,该序列在表达基础上编码具有至少一种IL-3样生物学特性的灵长类多肽并且包括选自下列一组的在5′-3′方向上的核苷酸序列a.表Ⅰ的序列;b.表Ⅱ的序列;c.在严格条件下可与(a)或(b)的DNA序列杂交的DNA序列;d.在非严格条件下可与(a)或(b)的DNA序列杂交并在表达基础上编码具有至少一种IL-3样生物学特性的DNA序列;和e.(a)或(b)序列的等位基因变异。
5.一种载体,该载体包含权利要求
4所述的DNA序列,该序列与表达控制序列有效的结合。
6.一种生产灵长类多肽的方法,该方法包括培养用含有编码IL-3样多肽表达的DNA序列的载体转化的细胞系与表达控制序列有效的结合。
7.按照权利要求
6所述的方法,其中所述的细胞系是哺乳动物细胞系。
8.按照权利要求
6所述的方法,其中所述的细胞系是细菌细胞系。

本发明通过重组技术提供一族新的灵长类IL-3样多肽。



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