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一种生产正己醇工程菌的构建方法

  • 专利名称
    一种生产正己醇工程菌的构建方法
  • 发明者
    不公告发明人
  • 公开日
    2014年2月12日
  • 申请日期
    2012年8月8日
  • 优先权日
    2012年8月8日
  • 申请人
    徐州瑞赛科技实业有限公司
  • 文档编号
    C12R1/19GK103571783SQ201210279050
  • 关键字
  • 权利要求
    1.一种生产正己醇工程菌,其特点为包含梭菌属Fe-氢酶基因hydA(GenBank登录号EU590683)和地衣芽孢杆菌β -葡聚糖酶基因lie (GenBank登录号ΑΥ225317)2.权利要求1所述工程菌的构建方法,包括设计引物,pUC19-hydA质粒和pUCm-T-lic质粒分别PCR扩增,在连接酶作用下连接成为重组DNA的基因hyd_lic,hyd-lic连接到载体pTE28aT7,得到质粒pTE28aT7-hyd_lic,质粒pTE28aT7- hyd_lic转化至宿主菌P.pastoris kM71感受态细胞中,摇瓶发酵3.利用权利要求 1或2所述工程菌以纤维素水解物为底物发酵制备正己醇
  • 技术领域
    本发明涉及微生物发酵
  • 背景技术
  • 具体实施方式
  • 专利摘要
    本发明涉及一种生产正己醇的工程菌,其特点为包含梭菌属Fe-氢酶基因hydA(GenBank登录号EU590683)和地衣芽孢杆菌β-葡聚糖酶基因lic(GenBank登录号AY225317)的重组基因hyd-lic构建的大肠杆菌工程菌。制备方法包括hydA基因和lic基因分别克隆、PCR扩增,在连接酶作用下连接成为重组DNA的基因hyd-lic,连接到载体pTE28aT7,得到质粒pTE28aT7-hyd-lic,转化P.pastoriskM71感受态细胞,摇瓶发酵得到高产正己醇工程菌,以纤维素半水解物为底物发酵生产正己醇。本发明的工程菌酶活达83U/mL,发酵产物正己醇含量最高可达35g/L。
  • 发明内容
  • 专利说明
    —种生产正己醇工程菌的构建方法
  • 专利详情
  • 全文pdf
  • 权力要求
  • 说明书
  • 法律状态
一种生产正己醇工程菌的构建方法[0001]【技术领域】,具体地,本发明涉及一种生产正己醇工程菌的构建方法。[0002] 正己醇是一种重要的医药、农药和香料中间体。近年来研究发现它也是一种理想的液体生物燃料,其燃烧热12402千卡/kg,比0#柴油的燃烧热9600千卡/kg高2805千卡/kg,是未来柴油的优良替代品,可以替代矿物燃料。工业正己醇的合成通常是采用乙烯催化控制聚合后,再水解、分离而得,还可由正己酸乙酯还原而得。[0003]目前已能利用生物发酵法制备乙醇、正丁醇、1,3-丙二醇等低碳醇,但是利用生物发酵法制备正己醇的技术还比较少见。美国齐凯姆公司发明了一种间接制备正丁醇和正己醇的方法,在包含碳水化合物源的培养基中进行同型产乙酸发酵得到乙酸酯、乙酸及其混合物,将其中一部分化学转化为乙醇,一部分和乙醇培养基中产酸发酵制备丁酸酯、丁酸、己酸酯、己酸或其混合物,再将其化学转化为丁醇和己醇。采用该方法,可以有70 %的碳源转化为了丁醇和己醇,但是该方法操作过程繁琐,且正己醇选择性并不高(丹.W.沃瑟,CN200980112342.X)。本地生物,如Clostridium Kluyveri,已报道发酵乙醇和醋酸纤维素,不仅产生丁酸、己酸、H2,还产生正丁醇和正己醇,但是,并没有对生物合成正己醇的酶进行定义。张等报道了正己醇合成,通过延伸Atsumi等开发的2-酮酸合成路径,大肠杆菌催化从葡萄糖合成正己醇。 Liao研究小组等人通过设计具有NAPH和乙酰CoA驱动力的正丁醇人工途径,获得新型大肠杆菌合成细胞工厂,正丁醇产量可达30g/L。美国科学家通过引入六碳化合物的合成酶Bktb (β-ketothiolase),延长改造正丁醇人工合成路径,开发出一种新型的正己醇合成细胞工厂,即乙酰辅酶A工程菌正丁醇路径合成正己醇,大肠杆菌工程菌催化,从葡萄糖直接合成正己醇,并初步研究了己醇合成酶及其影响因素(YasumasaDekishimaj Ethan 1.Lanj Claire R.Shenj et.al, Journal of the American ChemicalSociety, 2011,133:11399-11401)。但是目前由于Bktb酶活不高造成正己醇合成途径碳流较低,使得合成细胞工厂产物仍以正丁醇为主。后期计划通过定向改造Bktb,提高胞内己醇前体物酮基己酰CoA和可用NADH的量来进一步增加正己醇的生产。[0004]过去一直没有微生物能由葡萄糖合成高级醇类,现在研究人员已能通过基因工程手段对大肠杆菌进行改造,使其能够从葡萄糖合成长链醇类,包括异丁醇、2-甲基-1-丁醇或3-甲基-1-丁醇。我们认为,可以通过选择性地操纵基因,设计微生物,以合成许多不同的燃料和化学品。本发明利用基因工程方法,将梭菌属Fe-氢酶基因hydA (GenBank登录号:EU590683)和地衣芽孢杆菌β -葡聚糖酶基因lie (GenBank登录号:ΑΥ225317)的重组基因hyd-lic插入大肠杆菌构建了正己醇合成工程菌。[0005]
本发明提供了一种生产正己醇工程菌的构建方法。[0006]为实现上述目的,本发明采用的技术解决方案如下:
设计引物,pUC19-hydA质粒和pUCm-T_lic质粒分别PCR扩增,在连接酶作用下连接成为重组DNA的基因hyd-lic,
hyd-lic 连接到载体 pTE28aT7,得到质粒 pTE28aT7-hyd_lic,
质粒pTE28aT7-hyd_lic转化至宿主菌P.pastoris kM71感受态细胞中,利用YPD/G418平板筛选高拷贝转化子,摇瓶发酵。比色测定法测定酶活。
[0007]工程菌生产正己醇活性检测:收集重组菌发酵培养的上清液经PEG浓缩,硫酸铵沉淀,透析,制成粗酶液,检验产己醇活性如下:用pH3~8的醋酸缓冲液配制20%~60%的纤维素半水解物溶液,适量粗酶液,370C反应24h,再55°C反应12h,然后煮沸lOmin,微孔过滤,HPLC以及LC-MS检测产物。 本发明制备的工程菌应用于正己醇发酵,检测到了正己醇的生成,工程菌酶活达83U/mL,发酵产物正己醇含量最高可达35g/L。
[0008]
下面结合具体的实施例,对本发明作进一步的阐述,但不限于这些具体的实施例,而所有的实施例均按上述的操作步骤操作。
[0009]实施例1、生产正己醇工程菌的制备
菌株和质粒:大肠杆菌质粒pTE28aT7购自大连Katara公司、大肠杆菌质粒pUC19购自Promega公司、pUCm_T、P.pastoris kM71购自Invitrogen公司。质粒小量提取试剂盒购自上海生工生物工程公司,胶回收试剂盒购自TaKaRa公司,限制性核酸内切酶BamH1、EcoR1、Not1、Xoh1、SacI和T4 Iigase连接酶购自TakaRa公司。遗传霉素G418购自上海生工生物工程公司。其他试剂为国产分析纯。
[0010]培养基:MD、YPD、BMGY, BMMY培养基,重组酵母常用培养基。
[0011]主要仪器:PCR仪、凝胶成像仪和蛋白电泳仪购自美国BIO-RAD公司,DYY-6C型电泳仪购自北京六一仪器厂,高效液相`色谱仪和液质联用仪购自美国沃特斯公司。
[0012]表达载体的构建:
按照已发表的梭菌属Fe-氢酶基因hydA (GenBank登录号:EU590683)的cDNA序列,设计正反引物:正向引物Pl (5’ -ACGAGGAATTCATGAATTGGCCTACTCG-3’);反向引物P2(5’ -ATATGCGGCCGCGTGAACAGTAGGCAGAG-3’),正向引物带有EcoRI酶切位点,反向引物带有NotI酶切位点,以引物Pl,P2对重组质粒pUC19-hydA PCR扩增获得hydl基因片段。同样,设计地衣芽孢杆菌葡聚糖酶基因lie (GenBank登录号:ΑΥ225317)引物,Ρ1’(5,-ATGATGACCGACGATGAGAT-3’),Ρ2’( 5 ’-AATGAGCGTGAAGTGGAGTGGAGT-3’)。正向引物带有BamHI酶切位点,反向引物带有XohI酶切位点,以引物PI’,Ρ2’,,对重组质粒pUCm-T-lic PCR扩增获得Iicl基因片段。将hydl和Iicl基因片段,在连接酶T4 Iigase的作用,连接成为重组DNA的基因hyd-lic。连接到大肠杆菌载体pTE28aT7,得到表达质粒pTE28aT7-hyd-lic。
[0013]PCR扩增条件:94°C 30s, 56°C 30s,72°C 2min,30个循环。1%葡聚糖凝胶电泳回收PCR产物。
[0014]工程菌的构建以及高拷贝重组子的筛选:
将表达载体pTE28aT7-hyd-lic,经Sac I酶切线性化后回收含有目的基因的条带,电击转入P.pastoris kM71感受态细胞中,在MD平板长出单克隆,再经YPD/G418平板筛选多拷贝转化子,G418浓度筛选梯度依次为0.5、1、2 mg/mL,高拷贝转化子经PCR鉴定。
[0015]PCR扩增条件:94°C 30s, 56°C 30s,72°C 2min,30个循环。1%葡聚糖凝胶电泳回收PCR产物。
[0016]摇瓶发酵产正己醇发酵工程菌:
将鉴定正确的单菌落接种至5 mL Yro培养基,200r/min,30°C培养16 h,以10%的接种量接入BMGY培养基(50mL培养基/250mL三角瓶),30°C培养24 h,离心收集全部菌体,转入BMMY培养基(50mL培养基/250mL三角瓶),30°C,培养120h,每24h补加0.5%的甲醇,并取样200uL,离心收集上清进行12% SDS-PAGE确定目的蛋白的表达存在形式。
[0017]产正己醇工程菌的合成酶活测定:比色测定法实施例2、产正己醇工程菌的产己醇活性检测
收集重组菌发酵培养的上清液经聚乙二醇浓缩,硫酸铵沉淀,透析,制成粗酶液,检验产己醇活性如下:用PH4.3的醋酸缓冲液配制45%的纤维素半水解物溶液10mL,400uL粗酶液,37°C反应24h,再55°C反应12h,然后煮沸lOmin,微孔过滤,HPLC以及LC-MS检测产物。
[0018]HPLC条件:示差折光检测器,色谱柱:Hypersi 1NH2 , 250mm x 4.6mm;柱温:30°C ;池温(检测器):30°C ;流动相:70%乙肪;流速:1 mL/min;进样量:5μ?。
[0019]质谱条件:离子方式:ESI_、ESI+,离子源温度:100°C,脱溶剂气温度:250°C,质量范围:100~800 m/z,选择离子:ESI+:365.5Da;ES1-:341.4Da,光电倍增器电压:650Volts, Analyser Vacuum:2.6e-5mBar, Gas Flow: 4.21it/hr。
[0020]纤维素水解:
稀酸处理后,里氏木霉中的纤维素酶水解处理纤维素,500C,PH5.6,水解6-12h,获得纤维素水解物。
[0021]产醇发酵及产物提取:
两步法发酵:前培养是在L-试管中,以无菌操作加入5ml富营养培养基,以无菌牙签接入高产正己醇工程菌菌株的菌落。37°C、120r/min培养24h。将前培养物0.5ml接种至含有100ml富营养培养基的500ml三角瓶中,55°C、150r/min振荡培养12h。4°C,6000g无菌离心lOmin,弃上清,在离心管中以无菌磷酸盐缓冲液振荡混匀,然后在4°C,6000g无菌离心12min,弃上清。分别将不含有富营养培养基的菌体无菌接入10瓶含有100ml两步法发酵培养基的500ml三角瓶中,分别加入微量元素溶液0.lml,55°C、150r/min振荡培养40h。
[0022]正己醇的提取:
发酵收获后,收集菌体,过滤丝状菌体,用萃取剂萃取,在60°C水浴搅拌加热2h。再减压蒸馏,回收萃取剂,并得到产物正己醇。

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