专利名称：转dxr基因提高青蒿中青蒿素含量的方法青蒿(Artemisia annua L.)是菊科蒿属的一年生草本植物。青蒿素 (artemisinin)是从其地上部分分离的一种含有过氧桥结构的倍半職内酯化合物,是目前世界上公认的最有效的治疗疟疾的药物，特别是对于脑型疟疾和抗氯喹疟疾具有速效和低毒的特点。目前，世界卫生组织推荐的最有效的治疗疟疾的方法就是青蒿素联合疗法 (ACTs)。另外，随着对青蒿素药理研究的逐步深入，科学家发现青蒿素及其衍生物还具有抗炎、抗血吸虫、抗肿瘤以及免疫调节的功能。可见青蒿素是一种极具潜力的天然药物。目前青蒿素的主要来源是从青蒿植株的地上部分提取，然而青蒿中青蒿素的含量非常低，不同种植环境和种植品种中其平均含量在青蒿叶片干重的0.01-1 %，使得这种药物的大规模商业化生产受到了限制。由于青蒿素结构复杂，人工合成难度大，产量低，成本高，不具有可行性。有人尝试用组织培养和细胞工程的方法来生产青蒿素，然而青蒿素在愈伤组织中含量低于干重的O. I %，在芽中最高也只有干重的O. 16%，而大多数研究在根中没有检测到青蒿素。因此利用组织培养及细胞工程来生产青蒿素的可行性也不高。经对现有技术文献检索发现，Waleerat Banyai等在《Plant Cell Tissue and Organ Culture))(植物细胞组织器官培养)，2010年103卷255-265页发表了题 为“Overexpression of farnesyl pyrophosphate synthase (FPS) gene affected artemisinin content and growth of Artemisia annua L.，，( “过量表达法尼基焦憐酸合酶基因能影响青蒿中青蒿素的含量及青蒿的生长”)的论文，报道通过过量表达法尼基焦磷酸合酶(farnesyl pyrophosphate synthase, FPS),使转基因青蒿中青蒿素的含量提高了2.5-3. 6倍，但仍然只有I. 3%左右。不过，植物基因工程为提高青蒿中青蒿素的含量提供了一条可行的方法。现有技术中1_脱氧-D-木酮糖_5_憐酸还原异构酶(l-deoxy-D-xylulose-5-phosphate reductoisomerase, DXR)是青蒿素合成途径中的一个关键酶,是青蒿素代谢工程的重要祀点。采用基因工程手段，用关键酶基因DXR转化青蒿，将打破青蒿素生物合成的限速瓶颈，获得青蒿素高产的青蒿植株，为规模化生产青蒿素提供一条新途径。
本发明的目的在于克服现有技术中的不足，提供一种转DXR基因提高青蒿中青蒿素含量的方法。本发明涉及的关键酶基因克隆、载体构建、遗传转化、分子检测、青蒿素提取及含量测定用于本发明，建立了稳定提高青蒿中青蒿素含量的方法，为利用青蒿大规模生产青蒿素奠定坚实的基础。本发明是通过以下技术方案实现的I、一种转DXR基因提高青蒿中青蒿素含量的方法，该方法包括如下步骤(I)采用基因克隆方法获得青蒿关键酶基因DXR ；(2)把所述DXR基因连结于表达调控序列，构建含DXR基因的植物表达载体；(3)将所述含DXR基因的植物表达载体转化根癌农杆菌，获得含所述DXR基因植物表达载体的根癌农杆菌菌株；(4)利用所述含DXR基因植物表达载体的根癌农杆菌菌株转化青蒿，获得经PCR检测的整合DXR基因的转基因青蒿植株；(5)对所述转基因青蒿中青蒿素含量进行HPLC-ELSD测定，筛选获得青蒿素含量提高的转基因青蒿植株。优选的，在所述步骤(I)中，所述基因克隆方法包括以下步骤提取青蒿基因组总 RNA，将所获的青蒿基因组总RNA通过反转录酶XL反转录获得第一链cDNA，根据SEQ ID NO: I所示的DNA序列，设计扩增出完整编码框的上游引物和下游引物，所述上游引物为SEQ ID NO 2所示的DNA序列，所述下游引物为SEQ ID NO 3所示的DNA序列，并在所述上游和下游引物上分别引入限制性内切酶位点以便构建表达载体，以所述的第一链cDNA为模板，经 PCR扩增后进行测序。优选的，在所述步骤(2)中，所述构建含DXR基因的植物表达载体包括以下步骤 先构建中间载体pMDT18-dxr，再用XmaI和SacI酶切中间载体pMDT18_dxr和表达载体FSN， 回收DXR基因片段和FSN载体大片段，连接转化，挑取单克隆，提取质粒做PCR检测和酶切验证。进一步优选的,所述构建中间载体pMDT18_dxr包括以下步骤通过高保真酶扩增 DXR基因前后分别引入XmaI和SacI酶切位点的基因全长，通过连接酶连接到pMDT18载体上。优选的，在所述步骤(4)中，所述转化包括以下步骤外植体的预培养；农杆菌与所述外植体的共培养；抗性再生植株的筛选。进一步优选的，所述预培养包括以下步骤青蒿种子用75%乙醇浸泡lmin，再用 20% NaClO浸泡20min，无菌水冲洗3_4次，用无菌吸水纸吸干表面水分，接种于无激素的 MS固体培养基中，25°C光照培养，即可获得青蒿无菌苗，待苗长至5cm左右后，剪取无菌苗叶片外植体用于转化。进一步优选的，所述共培养包括以下步骤将所述叶片外植体转到共培养培养基中，滴加含活化好的所述含DXR基因植物双元表达载体的根癌农杆菌工程菌的1/2MS悬液， 使所述外植体与菌液充分接触，28°C暗培养3天，以滴加在不带有目的基因的根癌农杆菌的1/2MS液体培养基悬液的叶片外植体为对照。进一步优选的，所述筛选包括以下步骤将所述共培养3天的青蒿外植体转入到发芽筛选培养基上于25°C光照培养，每两周继代培养一次，经过2-3次继代后即可获得Kan 抗性丛生芽，将所述生长良好的抗性丛生芽剪下转入生根培养基上培养至生根，即可获得 Kan抗性再生青蒿植株。优选的，在所述步骤(4)中，所述PCR检测包括以下步骤设计合成DXR基因的引物；进行DNA扩增；紫外线下观察，若目的条带为阳性，则该株系即为所述转基因青蒿植株。优选的，在所述步骤(5)中，所述HPLC-ELSD测定包括以下条件所用色谱柱为C-18反相硅胶柱，流动相选用体积比为70 30的甲醇/K，柱温30°C，流速I. OmL/min,进样量20 μ L，蒸发光散射检测器漂移管温度40°C，放大系数为7，载气压力5bar。本发明的转DXR基因提高青蒿中青蒿素含量的方法，采用基因工程方法，将关键酶基因DXR导入青蒿植株中，获得了青蒿素含量显著提高的转基因青蒿株系，转DXR基因青蒿中青蒿素的含量最高可达到干重的19. 2mg/g，是非转化普通青蒿(8mg/g干重)的2. 4 倍，该发明对于为青蒿素的规模化生产提供高产、稳定新药源具有重要意义。图I为本发明的青蒿植株中青蒿素的含量检测结果图。

选用pMDT18载体(Takara, Dalian)为基本元件,构建中间载体pMDT18_dxr。具体地，通过高保真酶扩增DXR基因前后分别引入XmaI和SacI酶切位点的基因全长，通过连接酶连接到PMDT18载体上，由上海英骏生物技术服务有限公司测序确认基因的正确性。(2)含DXR基因的植物表达载体的构建以所述的FSN (FSN表达载体在pCAMBIA2300表达载体上改造获得并保存)为表达载体，将上述DXR基因连入其对应的酶切位点位置。具体地，XmaI和SacI双酶切中间载体 pMDT18-dxr和表达载体FSN。回收DXR基因片段和FSN载体大片段，连接转化，挑取单克隆， 提取质粒做PCR检测和酶切验证。本实施例将青蒿素生物合成途径关键酶基因DXR可操作性地连接于表达调控序列，形成含DXR基因的植物表达载体，该表达载体可用于通过代谢工程策略来提高青蒿中
青蒿素的含量。步骤三，含DXR基因双元植物表达载体根癌农杆菌工程菌的获得将上述含DXR基因的植物双元表达载体转入根癌农杆菌(如EHA105，为市场有公开出售的生物材料，可以从澳大利亚CAMBIA公司购得，菌株编号为Gambar I)，并进行PCR 验证。步骤四，根癌农杆菌介导DXR基因转化青蒿(I)外植体的预培养青蒿种子用75%乙醇浸泡lmin，再用20% NaClO浸泡20min，无菌水冲洗3_4次， 用无菌吸水纸吸干表面水分，接种于无激素的MS(Murashige and Skoog, 1962)固体培养基中，25°C、16h/8h (light/dark)光照培养，即可获得青蒿无菌苗。待苗长至5cm左右后，剪取无菌苗叶片外植体用于转化。(2)农杆菌与外植体的共培养将上述叶片外植体转到共培养培养基(1/2MS+AS 100ymol/L)中，滴加含活化好的所述含DXR基因植物双元表达载体的根癌农杆菌工程菌的1/2MS悬液，使上述外植体与菌液充分接触，28°C暗培养3天。以滴加在不带有目的基因的根癌农杆菌的1/2MS液体培养基悬液的叶片外植体为对照。(3)抗性再生植株的筛选将所述的共培养3天的青蒿外植体转入到发芽筛选培养基(MS+6-BA O. 5mg/ L+NAA O. 05mg/L+Kan 50mg/L+Cb 500mg/L)上于 25°C、16h/8h(light/dark)光照培养，每两周继代培养一次，经过2-3次继代后即可获得Kan抗性丛生芽。将生长良好的抗性丛生芽剪下转入生根培养基(1/2MS+Cb 125mg/L)上培养至生根，从而获得Kan抗性再生青蒿植株。步骤五，转基因青蒿植株的PCR检测根据目的基因所在表达盒p35s-dxr_nos序列p35s和dxr分别设计正向引物和反向引物对目的基因进行检测。结果表明，利用所设计的PCR特异引物，能扩增出576bp的特异DNA片段。而以非转化青蒿基因组DNA为模板时，没有扩增出任何片段。本实施例将所述的植物表达载体转化根癌农杆菌，获得用于转化青蒿的含DXR基因植物表达载体的根癌农杆菌菌株，利用所构建的根癌农杆菌菌株转化青蒿，获得经PCR 检测的转基因青蒿植株。转基因青蒿植株的获得为筛选获得较高青蒿素含量的青蒿株系提供了直接素材。步骤六，利用HPLC-ELSD测定转基因青蒿中青蒿素含量(l)HPLC-ELSD条件及系统适用性以及标准溶液的配制HPLC :采用 water alliance 2695 系统，色谱柱为 C-18 反相娃胶柱(Symmetry Shield TM C18, 5 μ m, 250X4. 6mm, Waters),流动相为甲醇水，甲醇水的体积比为 70 30，柱温30°C，流速I. OmL/min,进样量10 μ L，灵敏度(AUFS =1.0)，理论塔板数按青蒿素峰计算不低于2000。ELSD :采用water alliance 2420系统，蒸发光散射检测器漂移管温度40°C，放大系数(gain)为7,载气压力5bar ；精密称取青蒿素标准品(Sigma公司)2. Omg用ImL甲醇完全溶解,得到2mg/mL青蒿素标准品溶液，保存于_20°C备用。本发明中流动相为甲醇水，比例为70% 30%时，青蒿素的保留时间为
5.lmin，峰型良好。理论塔板数按青蒿素计算不低于2000。(2)标准曲线的制作将所述对照品溶液在相应色谱条件下分别进样2 μ L，4 μ L，6 μ L，8 μ L，10 μ L记录图谱及色谱参数，分别以峰面积(Y)对标准品含量(X，μ g)进行回归分析。通过研究，本发明中青蒿素在4-20 μ g范围内呈现良好的Iog-Iog线性关系。青蒿素对照品的Iog-Iog 线性回归方程为 Y = 5. 404e+0000X+l. 858e+0000, R2 = O. 999184。(3)样品的制备和青蒿素含量的测定青蒿素的提取过程基于Van Nieuwerburgh et al. (2006)中报道的方法取少量新鲜的青蒿叶片(l_2g鲜重)，于50ml试管中将其浸没在IOml氯仿中摇荡I分钟，将浸出液倒入新的试管中使氯仿挥发完全，取3ml无水乙醇充分溶解提取物，经O. 22 μ m过滤滤头过滤后用于HPLC检测。同时，氯仿提取后的叶片收集放入60°C烘箱进行烘干，称重(计算青蒿叶片的干重)；采用HPLC-ELSD测定青蒿素含量，样品进样体积为20 μ L，根据峰面积代入线形回归方程计算出样品中的青蒿素含量(mg)，再除以样品的青蒿叶干重(g)，从而计算出青蒿植株中青蒿素的含量。在本发明中转DXR基因显著提高青蒿中青蒿素含量。转DXR基因青高中青蒿素的含量最高可达到干重的19. 2mg/g(如图I所示)，是非转化普通青蒿(8mg/g干重)的2. 4 倍。本实施例采用HPLC-ELSD法测定了转基因青蒿中青蒿素含量，采用转化DXR基因的代谢工程策略获得了青蒿素高产的青蒿植株，为规模化生产青蒿素提供了一种理想方法。


本发明是一种生物技术领域的转DXR基因提高青蒿中青蒿素含量的方法。本发明从青蒿中克隆1-脱氧-D-木酮糖-5-磷酸还原异构酶DXR的基因，构建含DXR基因的植物表达载体，用根癌农杆菌介导，将DXR基因转入青蒿并再生出植株，PCR检测外源目的基因DXR的整合情况，高效液相色谱法及蒸发光散射检测器测定(HPLC-ELSD)转基因青蒿中青蒿素的含量，筛选获得青蒿素含量提高的转基因青蒿植株。本发明获得的转基因青蒿中青蒿素的含量显著提高，最高达到非转化对照植株的2.4倍，从而提供了一种提高青蒿中青蒿素含量的方法，为利用转基因青蒿大规模生产青蒿素打下了基础。